авторефераты диссертаций БЕСПЛАТНАЯ БИБЛИОТЕКА РОССИИ

КОНФЕРЕНЦИИ, КНИГИ, ПОСОБИЯ, НАУЧНЫЕ ИЗДАНИЯ

<< ГЛАВНАЯ
АГРОИНЖЕНЕРИЯ
АСТРОНОМИЯ
БЕЗОПАСНОСТЬ
БИОЛОГИЯ
ЗЕМЛЯ
ИНФОРМАТИКА
ИСКУССТВОВЕДЕНИЕ
ИСТОРИЯ
КУЛЬТУРОЛОГИЯ
МАШИНОСТРОЕНИЕ
МЕДИЦИНА
МЕТАЛЛУРГИЯ
МЕХАНИКА
ПЕДАГОГИКА
ПОЛИТИКА
ПРИБОРОСТРОЕНИЕ
ПРОДОВОЛЬСТВИЕ
ПСИХОЛОГИЯ
РАДИОТЕХНИКА
СЕЛЬСКОЕ ХОЗЯЙСТВО
СОЦИОЛОГИЯ
СТРОИТЕЛЬСТВО
ТЕХНИЧЕСКИЕ НАУКИ
ТРАНСПОРТ
ФАРМАЦЕВТИКА
ФИЗИКА
ФИЗИОЛОГИЯ
ФИЛОЛОГИЯ
ФИЛОСОФИЯ
ХИМИЯ
ЭКОНОМИКА
ЭЛЕКТРОТЕХНИКА
ЭНЕРГЕТИКА
ЮРИСПРУДЕНЦИЯ
ЯЗЫКОЗНАНИЕ
РАЗНОЕ
КОНТАКТЫ


Pages:   || 2 | 3 | 4 | 5 |   ...   | 8 |
-- [ Страница 1 ] --

Министерство сельского хозяйства

российской Федерации

ФгоУ вПо «Ульяновская госУдарственная

сельскохозяйственная акадеМия»

Материалы II-ой

Международной

научно-практической конференции

АгрАрнАя нАукА и обрАзовАние

нА современном этАпе рАзвития:

опыт, проблемы и пути их решения

8-10 июня 2010 годА

Том IV

АкТуАльные вопросы веТеринАрной

медицины, биологии и экологии

ульЯновск - 2010 Министерство сельского хозяйства российской Федерации ФгоУ вПо «Ульяновская госУдарственная сельскохозяйственная акадеМия»

Материалы Международной научно-практической конференции АгрАрнАя нАукА и обрАзовАние нА современном этАпе рАзвития:

опыт, проблемы и пути их решения 8-10 июня 2010 годА Том IV АкТуАльные вопросы веТеринАрной медицины, биологии и экологии ульЯновск - Материалы МеждУнародной наУчно-Практической конФеренции «актУальные воПросы аграрной наУки и образования», Ульяновск:, гсха, 2010, т.Iv, 238 с.

редакционная коллегия:

а.в.дозоров, ректор (гл. редактор) в.а.исайчев, с.н.золотУхин, в.а.ерМолаев, и.н.хайрУллин, е.М.роМанова Авторы опубликованных статей несут ответственность за патентную чистоту, достоверность и точность приведенных фактов, цитат, экономико статистических данных, собственных имен, географических названий и прочих сведений, а также за разглашение данных, не подлежащих открытой публикации.

Статьи приводятся в авторской редакции.

ISBN 987-5-902532-66- © ФгоУ вПо «Ульяновская госУдарственная сельскохозяйственная акадеМия», Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии УДК 619:616-091:636.5.087. ЭФФективность ПриМенения лития карбоната для ПроФилактики вакцинного стресса У цыПлят Алисейко А.А.

Aliseiko A.A.

Витебская ордена «Знак Почета» государственная академия ветеринарной медицины The Vitebsk State Academy of Veterinary Medicine It is established, that immunization of chickens against an infectious bursal disease (IBD) with and without lithium carbonate leads to authentic depression of activity of alaninaminotransaminase. The technological stress caused by immuni zation against IBD, leads also to depression of gains of alive mass. Application of lithium carbonate promotes smaller loss of weight at the vaccinated auks. Lithium carbonate considerably raises intensity of postvaccinal immunodefence against vi rus IBD.

Препараты лития давно привлекают внимание ветеринарных специалистов в силу перспективных разработок в биологии и медицине. Указанные соединения обладают антистрессорным, биостимулирующим, иммуностимулирующим действием за счет положительного влияния на нервную и эндокринную системы организма [1]. В последние годы появилось достаточное количество работ по успешному использованию солей лития для фармакокоррекции стрессовых состояний и нормализации обменных процессов у птиц [2, 3].

Целью наших исследований явилось изучение влияния лития карбоната на привесы живой массы, биохимические показатели плазмы крови и напряженность поствакцинального иммунитета у цыплят, вакцинированных против инфекционной бурсальной болезни (ИББ).

Исследования проведены на 36 цыплятах 5-22-дневного возраста, разделенных на 3 группы, по 12 птиц в каждой. Цыплят 1 и 2 групп в 8-дневном возрасте перорально иммунизировали против ИББ вирус-вакциной из штамма «КМИЭВ-61». Птице 1 группы за 3 дня до и 3 дня после вакцинации с водой задавали лития карбонат в дозе 15 мг/кг массы тела. Интактная птица 3 группы служила контролем. На 3, 7 и 14 дни после иммунизации проводили взвешивание цыплят. В полученной плазме определяли активность АсТ, АлТ, ГГТ и ЛДГ кинетически [4] на биохимическом анализаторе «Conelab 30i» («Thermo Electron», Финляндия). Концентрацию общего белка определяли в биуретовой реакции, альбумина - в реакции с бромкрезоловым зеленым, креатинина - в реакции Яффе, мочевины - ферментативным методом, триглицеридов сульфофосфованилиновым методом [4]. Контроль напряженности иммунитета против ИББ проводили путем исследования плазмы крови в ИФА.

Установлено, что на 3 день после вакцинации активность АлТ в плазме крови цыплят 1 группы составляла 12,50±2,53 МЕ/л, что было в 2 раза достоверно меньше, чем в контроле. Иммунизация цыплят без применения лития карбоната вызывала меньшие колебания активности данного фермента. Активность ЛДГ в Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии плазме крови птиц 1 и 3 групп на 3 день эксперимента составляла соответственно 1812,75±140,53 и 1722,50±163,20 МЕ/л. Применение вирус-вакцины против ИББ (2 группа) способствовало снижению данного показателя до 1514,50±156, МЕ/л, однако различия были недостоверными.

На 3 день эксперимента активность АсТ составляла: в 1 группе 221,00±10,11 МЕ/л;

во 2 группе - 217,75±12,36 МЕ/л;

в 3 группе - 225,50±7, МЕ/л. Активность ГГТ в плазме крови птиц на 3 день после вакцинации колебалась: 27,85±4,61 МЕ/л у цыплят 1 группы;

38,85±5,03 МЕ/л у цыплят группы;

28,80±1,60 МЕ/л у цыплят 3 группы.

На 7 и 14 дни после вакцинации в плазме крови цыплят 1, 2 и 3 групп активности индикаторных ферментов различалась несущественно.

Содержание общего белка, альбумина и креатинина в разные сроки исследований варьировало в узких пределах. На 3 день эксперимента у цыплят 1 и 2 групп содержание мочевой кислоты варьировало в пределах 181,00±25,00– 263,75±92,14 мкмоль/л, а в контроле – 263,50±58,71 мкмоль/л (P0,05). В последующем (на 7 и 14 дни после вакцинации) в плазме крови вакцинированных цыплят обеих групп отмечено постепенное увеличение данного показателя по сравнению с контролем.





На 3 день эксперимента титры антител у цыплят 1 и 2 групп составили соответственно 757,75±100,28 и 903,50±78,37 (в контроле – 383,25±78,37).

На 7 день эксперимента у подопытных птиц обеих групп отмечалось резкое повышение титров антител до уровня 1581,75±321,91 - 1582,75±182,30 что в 3,3-3,4 раза достоверно превышало контрольные значения. К 14 дню после иммунизации во 2 группе цыплят титры антител находились на уровне 1544,00±111,80. Использования лития карбоната (1 группа) способствовало увеличению данного показателя до 2557,25±326,97 (в контроле - 229,25±33,43;

P0,001). К 22-дневному возрасту среднесуточные привесы у птиц 1 группы составили 50,75 г, а у цыплят 2 группы - 45,5 г (в контроле – 59 г).

Заключение. Таким образом, иммунизация цыплят против ИББ на фоне применения лития карбоната приводит к достоверному снижению активности АлТ, что свидетельствует об угнетении функции гепатоцитов. Технологический стресс, обусловленный иммунизацией против ИББ, приводит к снижению среднесуточных привесов. Применение лития карбоната способствует меньшей потере веса у вакцинированных птиц. Лития карбонат значительно повышает напряженность поствакцинального иммунитета против вируса ИББ.

Литература:

1. Бышевский А.Ш., Терсенов О.А. Биохимия для врача. - Екатеринбург, 1994. – 384 с.

2. Лукичева В. Соли лития – антиоксидантная защита бройлеров // Птицеводство. – 2008. – № 11. – С. 37.

3. Пеньшина Е. Иммунокоррекция стрессовых состояний цыплят // Птицеводство. – 2006. – № 8. – С. 32.

4. Справочник по клинико-биохимической лабораторной диагностике : в 2 т. / В.С. Камышников. – Минск: Беларусь, 2000. – Т. 1. – 495 с.

Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии УДК 577.1+619: влияние ПолиУра на Постнатальное развитие крыс EffEct of polyurEthaNE oN poStNatal dEvElopmENt rat Базин А.В.

Basin A.W.

Ульяновская ГСХА Ulyanovsk State Agricultural Academy The article presents data on the study of the effect of the drug polyurethane on postnatal development in rats. The studies found no effect of polyurethane on the postnatal development of rats when injected during pregnancy.

Рождение потомства, способного адаптироваться к постнатальной жизни, требует развития функционально нормальных органов и систем. Известно, что пороки развития и функциональная неполноценность различных органов и систем часто выявляются после рождения, поэтому мы наблюдали за постнатальным развитием потомства у животных, подвергнутых воздействию полиура время беременности.

Изучение влияния полиура на постнатальное развитие крыс Рис. 1. - Развитие крысят, рожденных от самок, после введения полиура (Р0,05).

Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии проводили по «Методическим указаниям по изучению эмбриотоксического дей ствия фармакологических веществ и влияния их на репродуктивную функцию», одобренные фармакологическим комитетом МЗ СССР 10 января 1986 г. [А.П.

Дыбан, В.Ф. Пучков, Н.А. Чеботарь и др., 1986].

Влияние полиура на постнатальное развитие изучали на рожавших белых крысах, принесших помет. Препарат животным вводили подкожно ежедневно в терапевтической дозе. Контрольным животным с 1-го по 16-й дни беременности вводили воду для инъекций Показателем общего постнатального развития крысят слу жили:

динамика веса, время открывания глаз, появление шерсти, двигательная активность, способность к координации движений и выживаемость.

Исследовали эмоционально-двигательное поведе ние и способность к тонкой координации движений методом пе реворачивания в воздухе.

Данные экспериментальных исследований обрабатывали методом вариационной статистики. Для этой цели использовали прикладное программное обеспечение STATISTICA. Работу проводили согласно практическому руководству для пользователей [О.В. Солнцева, А.В.Севастьянов, 2004]. Статистическую значимость различий устанавливали по величине критерия Стьюдента.

Результаты исследований представлены в диаграмме.

В результате исследований установлено, что роды у подопытных самок наступали, как правило, на 23-й день беременности, как и у контрольных животных. Численность помета у самок, обработанных полиуром, была такой же, как и в контроле.

Масса тела и длина подопытных крысят мало отличались от контроля на протяжении всего периода изучения [диаграмма]. При исследовании эмоционально-двигательного поведения и способности к тонкой координации методом переворачивания в воздухе, с последующим вставанием на четыре лапы, различий между контрольными и подопытными крысятами не установлено.

Постнатальную гибель крысят наблюдали в единичных случаях, и она была сравнима с контролем.

ВЫВОД На основании проведенных исследований можно сделать заключение об отсутствии отрицательного влияния полиура на постнатальное развитие крысят при введении препарата беременным самкам.

Литература:

1. Дыбан, А.П. Методические указания по изучению эмбриотоксического действия фармакологических веществ и влияния их на репродуктивную функцию /А.П. Дыбан, В.Ф. Пучков, Н.А. Чеботарь и др. //М.: МЗ СССР. -1986. - С. 21.

2.Солнцева, О.В., Севастьянов, А.В. Анализ статистических данных в пакете STATISTICA. Практическое руководство для пользователей / О.В.

Солнцева, А.В. Севастьянов - Ульяновск, ГСХА, 2004.- 43с.

Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии УДК 577.1+619: изУчение Пирогенности ПолиУра Study pyrogENIcIty polyurIa Базин А.В.

Basin A.W.

Ульяновская ГСХА Ulyanovsk State Agricultural Academy In a scientific paper presents data on the pyrogenic effect of polyurethane.

As a result of research the author has established the safety of the drug polyurethane and his lack of pyrogenic action.

При оценке качества лекарственных средств важная роль отводится результатам испытания на пирогенность - одному из основных показателей безопасности лекарств. Согласно Государственной фармакопеи, испытанию на пирогенность подлежат все лекарственные средства для парентерального применения при объеме одноразовой дозы 10 мл и более.

В связи с тем, что полиур недостаточно изучен в отношении возможных негативных последствий влияния на организм животных, перед нами для исследования была поставлена следующая задача: изучить пирогенную активность полиура.

Пирогенное действие полиура изучали на 6 кроликах весом 2 - 3,5 кг путем внутривенного введения терапевтической дозы препарата с последующей термометрией животных на протяжении 3 ч [Н.В. Глазова, 2001]. Группа состояла из животных, близких по массе (отличающихся не более чем на 0, кг). В течение 3 сут. перед испытанием у каждого подопытного кролика измеряли температуру. Измерения проводили ежедневно утром до дачи корма при помощи медицинского ртутного термометра с точностью до 0,1 °С. Исходная температура подопытных кроликов должна быть в пределах 38,5 - 39,5 °С. Животных с бо лее высокой или более низкой температурой для опыта не использовали. Не позднее, чем за 18 ч. до опыта, кроликов переводили в помещение, в котором осуществляли испытание на пирогенность. Испытуемый препарат подогревали до 37 °С. Шприцы, иглы и необходимую стеклянную посуду стерилизовали при температуре 180 0 С в течение 60 мин. Препарат считали непирогенным, если сумма повышения температуры у 3-х кролей была меньше или равнялась 1,4°С;

если эта сумма превышала 2,2°С полиур считали пирогенным [Государственная фармакопея СССР-1989]. Перед введением раствора у кролика дважды с интервалом в 30 мин измеряли температуру. Различия в показателях температуры не превышали 0,2 °С. Результат последнего измерения принимали за исходную температуру. Раствор вводили не позднее чем через 15—30 мин после послед него измерения температуры. Данные экспериментальных исследований обрабатывали методом вариационной статистики. Для этой цели использовали прикладное программное обеспечение STATISTICA. Работу проводили согласно практическому руководству для пользователей [О.В. Солнцева, Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии 0,8 0, 0, отклонения температуры, отклонения температуры, 0, суммарное значение 0, среднее значение 0,5 0, +град.с град.с 0, 0, 0, 0, 0, 0, 0 1 час 2 часа 3 часа время 1 группа (самцы) 2 группа (самки) 1 группа (самцы) 2 группа (самки) Рис. 1. - Пирогенная активность полиура.

А.В.Севастьянов, 2004]. Статистическую значимость различий устанавливали по величине критерия Стьюдента.

После введения кроликам терапевтической дозы полиура общее состояние животных было удовлетворительное, явления токсикоза отсутствовали.

Результаты исследований представлены в диаграмме.

Анализируя данные диаграммы, необходимо отметить, что при внутривенном введении животным терапевтической дозы полиура повышение температуры у экспериментальных кроликов не наблюдается, что свидетельствует об отсутствии пирогенного действия препарата в исследованной дозе.

ВЫВОД Внутривенное введение полиура не приводит к токсикозу и развитию патологических процессов в организме, препарат не обладает пирогенным действием.

Литература:

1.Глазова, Н.В. О внедрении современных методов контроля пирогенности фармацевтических объектов/Н.В. Глазова//Фарм. производителю. -2001. -№17, №3. -С. 23-26.

2. Солнцева, О.В., Севастьянов, А.В. Анализ статистических данных в пакете STATISTICA. Практическое руководство для пользователей./О.В.

Солнцева, А.В. Севастьянов - Ульяновск, ГСХА, 2004.- 43с.

Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии УДК 577.1+619: динаМика остаточных количеств ФУразолидона в Молоке коров После ПриМенения ФУратриха dyNamIcS furazolIdoNE rESIduES IN mIlk of cowS aftEr applIcatIoN furatrIha Борисов С.А.

Borisov S.A.

Ульяновская ГСХА Ulyanovsk State Agricultural Academy The article shows the residual amount after applying Furazolidone furatri ha. These data suggest that furazolidone with milk allocated within 48 hours after drug administration Несмотря на достаточно большой спектр лекарственных препаратов, предлагаемых для применения в ветеринарной акушерско-гинекологической практике, многие из них имеют ряд достаточно существенных недостатков, это – высокая токсичность, низкая терапевтическая эффективность, неудобство для применения рекомендуемых лекарственных форм, высокая стоимость курса лечения. Кроме этого, некоторые из этих препаратов обладают побочными действиями, нередко снижают качество молока у лактирующих коров.

В ОАО завод «Ветеринарные препараты» (Россия, г. Гусь-Хрустальный) совместно с Волгоградским научно-исследовательским технологическим институтом мясомолочного скотоводства и переработки продукции животноводства Российской академии сельскохозяйственных наук (г.

Волгоград) для лечения и профилактики эндометритов крупного рогатого скота разработан препарат - фуратрих. Фуратрих — внутриматочные суппозитории, активнодействующими веществами которого являются метронидазол, фуразолидон и фуза тыквенная.

В связи с малоизученностью токсикологии и влияния препарата на организм сельскохозяйственных животных целью нашей работы было изучение остаточных количеств фуразолидона после введения фуратриха.

Для решения поставленной задачи трем подопытным коровам препарат фуратрих вводили в количестве 20 г (2 суппозитория), три раза через каждые 24 часа, благодаря чему общая доза препарата на 1 корову составляла 60г;

средняя масса тела подопытных коров составляла 460 кг. Молоко от коров брали для исследования через 24, 48 и 96 часов после введения последней дозы препарата.

Определение фуразолидона в молоке проводили с помощью спектрофотометрическим методом. Данные экспериментальных исследований обрабатывали методом вариационной статистики. Для этой цели использовали прикладное программное обеспечение STATISTICA. Работу проводили согласно практическому руководству для пользователей [1]. Статистическую значимость различий устанавливали по величине критерия Стьюдента. Результаты исследования приведены в таблице.

Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии Таблица 1. Уровень фуразолидона в молоке коров после введения фуратриха, мкг/кг сроки исследования в часах 224 448 00,76±2,1 00,114±1,1 00,0±0, Приведенные данные свидетельствуют о том, что фуразолидон с молоком выделяется в течение 48 часов.

Внутриматочное введение фуратриха коровам не приводила к токсикозу подопытных животных.

Литература:

1.Солнцева О.В., Севастьянов А.В. Анализ статистических данных в УДК 619:617-001.4-002.3:615. действие Пробиотиков на возбУдителей гнойной МикроФлоры и заживление гнойных ран actIvIty of proBIotIcS at pathogENIc orgaNISmS of purulENt mIcroflora aNd hEalINg of purulENt wouNdS Веремей Э.И., Коломиец Э.И., Красочко П.А., Ломако Ю.В., Журба В.А., РукольВ.М.

Veremei E.I., Kolomiez E.I., Krasochko P.A., Lomako J.V., Zhurba V.A., Rucol V.M.

Витебская ордена «Знак Почета» государственная академия ветеринарной медицины»

Институт микробиологии НАН Беларуси Институт экспериментальной ветеринарии им. С.Н. Вышелесского Vitebsk State Academy of Veterinary Medicine»

Institute of Microbiologi NAS RB Institute of Experimental Veterinery Medicine, named of ter S.N. Byshelesski We have established that probiotic helforming preparation on The basis of sporeforming bacteria suppresses The growth and development of challenge strains which cause purulent inflammation.

Распространение гнойно-некротических заболеваний высокопродуктивного крупного рогатого скота постоянно увеличивается.

Если в 2000-2005 г.г. заболеваемость коров гнойно-некротическими болезнями составляла 10,24%, то в 2006-2010 г.г. процент заболеваемости возрос до 21%, а по некоторым хозяйствам до 30%. В отдельных хозяйствах каждая 3- корова имеет гнойную патологию.

Хозяйства имеют от 20 до 30% и более потерь от недополучения Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии молочной продуктивности, а также от качества молока. Большое количество соматических клеток в молоке дают не только маститы, но и любое воспаление, а тем более гнойные заболевания. Такое молоко не пригодно к употреблению в пищу людям, а применение антибиотиков при указанной патологии ухудшает качество молока.

Длительное, бесконтрольное, неграмотное использование антибиотиков привело к резкому повышению устойчивости микроорганизмов, а нарушение любых технологических норм значительно снижает резистентность организма.

В таких условиях традиционные методы лечения становятся неэффективными.

Это вынуждает вести поиск новых эффективных и экологически чистых методов терапии гнойной патологии.

Мировая практика показывает, что лучшей лекарственной формой для наружного применения является гелевая основа. Такая форма хорошо наносится, равномерно распределяется на раневую поверхность и не препятствует физиологической функции слизистых оболочек и кожи. Кроме того, она обладает осмотической активностью, что особенно благоприятно при обработке загрязненных ран, когда лекарство действует как вымывающее и очищающее средство. Гель растворяет гидрофильные и гидрофобные вещества, активно адсорбирует раневой экссудат. К таким препаратам следует отнести пробиотические средства в гелевой основе, которые не требуют средств защиты, не агрессивны к любым поверхностям, абсолютно безопасны для людей и животных.

Учитывая изложенное, нами была поставлена цель, изучить этиологическую структуру возбудителей бактериальных инфекций гнойно некротических поражений крупного рогатого скота, а затем на лабораторных животных изучить действие пробиотиков на выделенные культуры.

Для изучения этиологической структуры возбудителей бактериальных инфекций гнойно-некротических поражений кожи крупного рогатого скота исследовали материал от заболевших животных с диагнозами: абсцесс, флегмона, инфекционные раны, гнойные бурситы, флегмона пальца и мякиша, флегмона венчика и др. Результатами микробиологического исследования выявлена следующая микрофлора Staph. epidermidis (46,2%), Proteus vulgaris (39,6%), E.

coli (52,8%), Staph. aureus (59,4%), Staph pyogenes (26,4%), Ps. aeruginosa (100%), Klebsiella sp. (6,6%).

После устранения этиологической структуры возбудителей нами проводилось изучение антогонетической активности различных штаммов бацилл в отношении гнойных экссудатов от коров.

Тест-объектами служили экссудаты из раневой поверхности №№ 1-5. В качестве антагонистов использовали 5 штаммов бактерий p. Bacillus, культивирование которых проводилось в среде Мейнелла с мелассой, в колбах Эрленмейера в течение 5 суток на качалке при 30°С. Проверялись как супернатанты, так и неотцентрифугированная культуральная жидкость бактерий с клетками. Пипеткой вносили 100 мкл культуры исследуемого штамма стерильно в лунки, проделанные в двухслойном агаре (МПА 2% + МПА 1,2%) с биоматериалом из раневой поверхности. Через сутки культивирования в термостате при 37°С оценивали результаты по образованию/отсутствию зон задержки роста бактерий из биоматериала вокруг лунки.

После проведенных исследований нами установлено, что наилучшим Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии штаммом – антогонистом оказался вид B. Subtilis из коллекции лаборатории средств биологического контроля института микробиологии НАНБ являясь активным в отношении ассоциации бактерий из гнойных экссудатов от коров и перспективным для создания комплексного препарата для наружного применения.

Следующим этапом изучали действие пробиотиков на гелевой основе на подавление микрофлоры и заживление экспериментальных ран у лабораторных животных (кроликов).

Для определения влияния пробиотиков на заживления гнойных ран у кроликов нами было использовано четыре кролика в возрасте 1-1,1 года массой 3-3,5 кг средней упитанности, две самки и два самца. Все животные были клинически здоровые и содержались в индивидуальных клетках. Всем животным области бедра подготовили операционное поле размером 5x7см, провели инфильтрационное обезболивание 0,25% раствором новакаина по месту разреза, затем были нанесены кожно-мышечные раны длиной 2,5-3 см.

В рану кролика под № 1 была помещена культура E.coli, в рану кролика под № 2 помещена культура Str. pyogenes, кролику под № 3 провели заражение раны Staph. epidermidis, кролику №4 в рану была внесена ассоциация микроорганизмов E.Coli, Staph. epidermidis, Str. pyogenes. Затем раны были закрыты стерильными марлевыми салфетками и закреплены коллодием. Перед нанесением ран на первые, третьи, седьмые и четырнадцатые сутки проводили клиническое исследование кроликов (подсчитали пульс, дыхание, измерили температуру и учитывали динамику воспалительной реакции), а так же были отобраны пробы крови для исследований.

В результате исследований установлено, что отклонений в общем состоянии животных не было до опыта: температура (°С) - 38,5±1,17;

пульс (уд/ мин) - 157,4±0,63;

дыхание (в мин) — 56,3±2,16 и в конце опыта: температура (°С) - 38,4±0,58;

пульс (уд/мин) - 158,7±1,15;

дыхание (в мин) - 57,5±11,62.

Вокруг раны в течении трех суток отмечали повышения местной тем пературы, нарастающую припухлость, гиперемию и болезненность. На 4 сутки в полостях ран произошло нагноение с последующим, выделением гнойного экссудата. Для лечения гнойных ран у всех 4 кроликов, после хирургической обработки, был внесен гель пробиотик, который был выбран на основании предварительных исследований проведенных in vitro в лаборатории диагностики РУП «Институт экспериментальной ветеринарии им. С.Н. Вышелесского». Гель пробиотик вносили в раны трех кратно с интервалом 48 часов.

На седьмые сутки у всех животных наблюдалось уменьшение воспалительной реакции (слабо выраженное повышение местной температуры и гиперемии, снижение болезненности, незначительное уменьшение припухлости). Наблюдалось снижение выделяемого гнойного экссудата, по краям раны наблюдался рост грануляционной ткани.

На 14 сутки у кроликов отмечалось отсутствие клинических признаков воспаления. На участках где были нанесены раны наблюдали сформированный струп, после снятия, которого отмечали полное заполнение раневой полости грануляционной тканью. Гнойный экссудат отсутствовал.

При изучении периферической крови выявлено содержание: гемоглобина до опыта 95,8±7,05 в конце опыта 105,8±5,02;

эритроцитов с 6,98±0, до 6,65±0,35;

лейкоцитов 6,58±0,24 - 6,39±0,26;

СОЭ 2,4±0,24 - 1,6±0,24.

Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии При изучении лейкограммы в течение опыта отмечено сегментоядерных нейтрофилов с 36,2±1,02 до 38,4±4,16;

моноцитов с 2,0±0,32 - 2,6±0,24 и снижение эозинофилов с 0,8±0,37 до 0,6±0,24, палачкоядерных нейтрофилов 6,8±0,66 - 6,2±1,16и лимфоцитов соответственно;

50,87±0,92 - 50,2±2,75.

Таким образом, следует отметить, что приготовленный гелеобразующий пробиотик на основе спорообразующих бактерий эффективно подавляет рост и развитие микроорганизмов, которые вызывали гнойное воспаление. В результате этого раны в течение 14,75±0,5 суток зажили по вторичному натяжению.

УДК:619:611.13:611.98:636.393. артериальная васкУляризация органов тазовой конечности коз зааненской Породы artErIal vaScularISatIoN of thE hINd EXtrEmIty of goatS of zaaNENSky BrEEd Вирунен С.В.

Virunen S.V.

Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины The St.-Petersburg state academy Veterinary medicine The analysis of the domestic and foreign literature has shown that research es of the hind extremity zaanesky breeds remained till now almost not opened with goats. It does not allow to create a full picture of laws of blood supply in area тазовой finiteness that complicates work of veterinary surgeons and forecasting of distribution and an outcome of the diseases often arising in this area. For object in view achievement before us there was a problem to define skeleto - and syntopy the main arteries of the hind extremity of goats zaanensky breeds.

Козоводство является крупной товарной отраслью сельского хозяйства.

С недавних пор, благодаря ценным качествам козьего молока, молочное козоводство в России стало приоритетным направлением для многих фермеров.

В Ленинградской области для разведения распространена зааненская порода козы. Зааненская или заанентальская порода выведена в Швейцарии,в долине реки Зане (район Бернских Альп). Свое название получила от Заанеской долины, являющейся центром племенного разведения и наибольшего распространения.

В настоящее время она является одной из наиболее высокопродуктивных молочных пород коз в мире и отличается долголетием и крепким здоровьем.

Значительное влияние на темпы роста и развития органов и тканей тазовой конечности коз зааненской породы оказывает сердечно-сосудистая система.

Кроме того, важно отметить, что имеющие сведения о сосудистом русле тазовой конечности млекопитающих посвящены, в основном, области автоподия и отражают характер скелетотомии магистральных артерий стопы. Анализ отечественной и зарубежной литературы показал, что особенности сосудистого Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии русла тазовой конечности у коз зааненской породы до настоящего времени оставались практически нераскрытыми. Это не позволяет создать полную картину закономерностей кровоснабжения в области тазовой конечности, что затрудняет работу ветеринарных хирургов и прогнозирование распространения и исхода заболеваний, часто возникающих в этой области.

Для достижения поставленной цели перед нами стояла задача определить скелето- и синтопию магистральных артерий тазовой конечности коз зааненской породы. Исследованию подвергали тазовые конечности коз зааненской породы, доставленных с козоводческой фермы Ленинградской области. Эвтаназию животных осуществляли путем внутривенного введения летальны доз анестетика (дозировка наркоза *3) в соответствии с «Правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных», утвержденного приказом Министерства здравоохранения CCCР №755 от 12 августа 1977 года.

Для выявления характера ветвления артерий тазовой конечности коз зааненской породы применяли метод инъекции сосудов рентгеноконтрастными (10% свинцовый сурик в скипидаре с добавлением 1-2 % хлороформа) и затвердевающими массами (смесь туши с желатином) с последующим тонким анатомическим препарированием сосудов. Инъекцию сосудов рентгеноконтрасными и затвердевающими массами проводили через брюшную аорту, предварительно подогрев тушу в водяной бане при температуре 50С в течение 4-5 часов. По окончании наливки препараты для фиксации помещали в 1,0 % раствор формалина. Через 7-10 суток препарировали под контролем стереоскопического микроскопа МБС-10. В ходе препарирования артерий препарат фотографировали цифровой камерой и проводили морфометрические измерения. Весь морфометрический материал обработан методом вариационной статистики с помощью прикладных программ: Microsoft Office Exell 2003, Statistica 6.0 на ПК «Intel Celeron 2400».

Терминология дана в соответствии с четвертой редакцией Международной ветеринарной анатомической номенклатуры (Н.В. Зеленевский, 2003).

Всего исследовано 20 трупов коз зааненской породы.

При анализе результатов исследования было установлено, что основная артериальная магистраль тазовой конечности коз зааненской породы начинается от брюшной аорты. Наружная подвздошная артерия на уровне пятого поясничного позвонка опускается дистально в область тазобедренного сустава. У лонной кости она погружается в бедренный канал. Диаметр наружной подвздошной артерии составляет в среднем 2,35±0,03 мм. До погружения в бедренный канал от наружной подвздошной артерии отходит надчревно-срамной ствол, диаметр которого составляет в среднем 2,15±0, мм. Вскоре ствол делится на наружную срамную и каудальную надчревную артерии. Бедренная артерия располагается внутри угла тазобедренного сустава, затем косо пересекает бедренную кость и переходит в подколенную область под икроножную мышцу. Диаметр бедренной артерии составляет в среднем 2,25±0,02 мм. От артериальной магистрали дистальнее устья каудальной бедренной артерии отходит икроножная артерия. Длина ее незначительная и вскоре она делится на латеральную и медиальную ветви, проникающие в одноименные головки икроножной мышцы. В продолжение бедренной артерии идет подколенная артерия, которая располагается на каудальной поверхности капсулы коленного сустава, прикрытая икроножной и подколенной мышцами.

Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии Диаметр подколенной артерии составляет в среднем 1,72±0,02 мм.

Подколенная артерия у проксимального эпифиза костей голени делится на краниальную и каудальную большеберцовые артерии. Первая, проходит по дорсальной поверхности большой берцовой кости, Затем она спускается на заплюсну и переходит в области проксимальных эпифизов между пяточной и таранной костями на плантарную поверхность как прободающая заплюсневая артерия. Диаметр краниальной большеберцовой артерии у взрослого животного в среднем составляет 1,80±0,03мм.

Каудальная большеберцовая артерия – развита слабо и кровоснабжает мышцы заднебедренной группы разгибателей тазобедренного сустава. Диаметр каудальной большеберцовой артерии у взрослого животного в среднем составляет 1,45±0,02мм.

Параллельно краниальной большеберцовой артерии на уровне середины бедра до бедренной артерии отделяется артерия сафена (подкожная артерия бедра, голени, стопы). Она выходит под кожу бедра с медиальной поверхности между стройной и гребешковой мышцами. Достигнув скакательного сустава, она отдает лодыжковые артерии и несколько веточек на медиальную поверхность коленного сустава, в кожу, фасции и стройную мышцу. Диаметр артерии сафена у взрослого животного в среднем составляет 1,65±0,03мм. Область заплюсны васкуляризируется латеральной, медиальной, поперечной заплюсневыми артериями. Диаметр этих артерий у взрослого животного в среднем составляет 1,15±0,03мм. Область плюсны кровоснабжают плантарные плюсневые артерии, а область пальцев - дорсальные и плантарные собственные пальцевые артерии.

Таким образом, ангиоархитектоника тазовой конечности у коз зааненской породы имеет выраженные видовые особенности при наличии общих для млекопитающих закономерностей топографии сосудистых магистралей.

Литература:

1. Зеленевский Н.В. Международная ветеринарная анатомическая номенклатура, четвертая редакция. – Москва – КолосС, 2003. – 351С;

2. Зеленевский Н.В., Стекольников А.А. Практикум по ветеринарной анатомии. Том 2. – Санкт-Петербург – Логос, 2006;

3. Малофеев Ю.М. Морфология системы крово- лимфообращения животных // Актуальные проблемы в ветеринарии. – Барнаул, 2000. – С. 1-136.

Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии УДК 636.5/.6:636.084.413 (045) влияние нехватки Минеральных веЩеств в рационах цыПлят-бройлеров на биохиМический состав крови INfluENcE of ShortagE of mINEral SuBStaNcES IN dIEtS of chIckENS-BroIlErS oN BIochEmIcal StructurE of Blood Вишняков А.И.

Vichnyakov A.I.

Оренбургский государственный университет Orenburg State University Age changes of biochemical indicators of blood of chickens-broilers at feed ing by their diet with a lack of mineral substances and exchange energy are inves tigated. At different stages postincubatory the development period the increase in their blood of quantity of urea, cholesterol and glucose in comparison with group of the chickens receiving a high-grade diet is established.

Птицеводство – одна из наиболее активно развивающихся отраслей сельского хозяйства. Даже при сложной ситуации на мировом финансовом рынке и других трудностях в 2008 г. производство мяса птицы увеличилось на 300 тыс. т. Но проблем в отрасли по-прежнему очень много [2].

Продуктивность на 30–40% зависит от поступления энергии, на 20–30% – от протеина, на 10–20% – от биологически активных веществ, содержащихся в премиксах. В первые три недели жизни, когда интенсивно растут и развиваются внутренние органы, крайне важно обеспечивать птицу не только легкоусвояемыми источниками энергии, но и балансировать корма по минеральным веществам [1].

Существенное влияние на физиологическое состояние и продуктивность сельскохозяйственной птицы в условиях промышленного птицеводства оказывает качество кормов и кормовых добавок.

Целью настоящей работы было изучение возрастной динамики некоторых биохимических показателей крови цыплят-бройлеров при кормлении их рационом с минимальным содержанием минеральных веществ и обменной энергии.

Для этого сформированы две группы цыплят-бройлеров: контрольная – с полноценным рационом, содержащим минеральные вещества и обменную энергию в пределах нормы, и опытная – получающая минимальное количество минеральных веществ и обменной энергии. При расчетах рационов использовали данные потребности птицы в питательных веществах и микроэлементах [3]. Для изучения биохимического состава крови убой цыплят проводился в возрасте 10, 20, 30, 40 и 50 суток в количестве по 5 голов. При этом определяли содержание общего белка, альбуминов, глобулинов, остаточного азота, мочевины, креатинина, холестерина и глюкозы.

В результате проведённых исследований установлено, что в возрасте Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии десяти суток содержание общего белка в сыворотке крови цыплят составляет 23,933±2,273 г/л. В 20суточном возрасте у цыплят контрольной группы белка 29,033±2,842 г/л, а опытной – 34,80±5,250 г/л. К 30 суткам исследуемый показатель у первых возрастает до 34,867±3,467 г/л, а у последних снижается до 28,633±0,906 г/л. В последующие десять суток содержание общего белка увеличивается у цыплят и контрольной группы (до 35,933±1,683 г/л) и опытной (34,867±1,431 г/л). В возрасте 50 суток в контрольной группе количество белка в среднем составляет 28,567±1,224 г/л, а в опытной – 28,843±0,111 г/л.

Содержание альбуминов у десятисуточных цыплят составляет 12,10±0, г/л. В возрасте 20 суток в контрольной группе их количество равно 8,167±1, г/л, а в опытной – 10,0±1,155 г/л. К 30-суточному возрасту у цыплят контрольной группы количество альбуминов увеличивается до 11,267±0,524 г/л, а в опытной изменяется мало и составляет 10,033±0,696 г/л. К 40-суточному возрасту количество альбуминов увеличивается в обеих группах, при этом в контрольной группе их содержание составляет 12,70±0,794 г/л, а в опытной – 14,133±0, г/л. Однако к 50 суткам исследуемый показатель снижается до 9,767±0,406 г/л в контрольной группе и до 9,787±0,487 г/л в опытной.

Доля глобулинов в большинстве исследуемых возрастных групп превосходит альбумины. В крови цыплят десятисуточного возраста количество глобулинов составляет 11,833±2,202 г/л. К 20-суточному возрасту их количество у цыплят контрольной группы достигает 20,867±1,690 г/л, а у цыплят опытной – 20,80±6,274 г/л. До 30-суточного возраста содержание глобулинов у цыплят контрольной группы продолжает увеличиваться и достигает 23,60±3,449 г/л, а у цыплят опытной, напротив, уменьшается до 18,60±1,415 г/л. В возрасте суток количество глобулинов в контрольной группе составляет 23,233±1,386 г/л, в опытной 20,733±1,20 г/л, а в 50-суточном, соответственно, 18,80±0,833 г/л и 19,057±0,594 г/л.

Содержание остаточного азота в крови у десятисуточных цыплят составляет 18,10±1,966 ммоль/л. К 20-суточному возрасту его количество несколько увеличивается и составляет в контрольной группе 18,30±0, ммоль/л, а в опытной 18,90±2,888 ммоль/л. В течение следующих 20 суток наблюдается уменьшение исследуемого показателя в обеих группах. Так, у цыплят контрольной группы содержание остаточного азота в крови в возрасте 30 суток составляет 16,733±0,775 ммоль/л, в 40 суток – 14,10±0,100 ммоль/л, а в опытной группе – 18,433±1,065 ммоль/л и 15,267±1,120 ммоль/л, соответственно. К 50 суточному возрасту концентрация остаточного азота увеличивается, достигая в контрольной группе 17,467±0,669 ммоль/л, а в опытной – 16,30±0,586 ммоль/л.

Согласно результатам наших исследований концентрация мочевины у цыплят в возрасте десяти суток составляет 1,617±0,508 ммоль/л. В возрасте 20 суток этот показатель у цыплят контрольной группы равен 0,837±0, ммоль/л, а у цыплят опытной – 2,763±0,576 ммоль/л. К 30-суточному возрасту содержание мочевины в контрольной группе увеличивается до 1,017±0, ммоль/л, а в опытной, напротив, уменьшается до 0,793±0,188 ммоль/л. В дальнейшем концентрация мочевины в крови цыплят контрольной группы снижается и к 40-суточному возрасту составляет 0,773±0,139 ммоль/л, а к 50 суточному – 0,580±0,042 ммоль/л. В опытной же группе к 40-суточному возрасту содержание мочевины увеличивается до 0,890±0,342 ммоль/л, а к 50-суточному – уменьшается до 0,840±0,178 ммоль/л.

Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии Концентрация креатинина в крови цыплят изменяется в зависимости от возраста и уровня кормления. Так, в возрасте десяти суток содержание креатинина составляет 61,20±5,918 мкмоль/л. В 20-суточном возрасте его концентрация у цыплят контрольной группы равна 39,533±1,670 мкмоль/л, а опытной – 47,967±9,592 мкмоль/л. В контрольной группе возрастные изменения концентрации креатинина демонстрируют волнообразный характер. К 30 суткам исследуемый показатель достигает 50,60±8,057 мкмоль/л, затем уменьшается до 35,00±0,751 мкмоль/л (40 суток) и к концу исследуемого периода вновь увеличивается до 43,767±3,514 мкмоль/л. В крови цыплят опытной группы происходит снижение содержания креатинина до 38,00±5,103 мкмоль/л к 30 суточному возрасту и до 36,533±0,669 мкмоль/л к 40-суточному. В последнюю декаду исследуемого периода постинкубационного онтогенеза исследуемый показатель увеличивается до 40,00±2,003 мкмоль/л.

Количество холестерина в крови цыплят с возрастом изменяется неодинаково. В возрасте десяти суток его концентрация составляет 2,567±0, ммоль/л. К 20-суточному возрасту в контрольной группе исследуемый показатель увеличивается до 3,30±0,208 ммоль/л, в опытной – до 2,933±0,033 ммоль/л. В 30-суточном возрасте концентрация холестерина в крови цыплят, получающих общий рацион составляет 2,833±0,176 ммоль/л, а в опытной группе – 2,567±0, ммоль/л. В дальнейшем тенденция к снижению содержания холестерина в крови цыплят контрольной группы сохраняется и к 40 суткам его концентрация составляет 2,567±0,088 ммоль/л, а к 50 суткам – 2,167±0,203 ммоль/л. В опытной группе в возрасте 40 суток зафиксирован максимальный уровень холестерина в крови, который составил 2,967±0,348 ммоль/л, а к 50 суткам его содержание снизилось до 2,50±0,058 ммоль/л.

Содержание глюкозы у десятисуточных цыплят составляет 2,390±0, ммоль/л. До 20-суточного возраста этот показатель увеличивается в крови цыплят контрольной группы в среднем на 5,630 ммоль/л, а опытной – на 1, ммоль/л. К 30-суточному возрасту концентрация глюкозы в контрольной группе снижается до 2,833±1,948 ммоль/л, а в опытной – до 0,137±0,018 ммоль/л. В течение следующих десяти дней постинкубационного периода содержание глюкозы увеличивается в крови цыплят и контрольной группы (8,873±1, ммоль/л) и опытной (10,940±1,208 ммоль/л), а к 50-суточному возрасту вновь снижается до 7,140±1,060 ммоль/л и 7,907±0,846 ммоль/л, соответственно.

Таким образом, в крови цыплят опытной группы наблюдается большее содержание остаточного азота. К концу исследуемого периода постинкубационного онтогенеза у цыплят опытной группы количество общего белка (альбуминов и глобулинов в том числе), мочевины, холестерина и глюкозы превосходят аналогичные показатели цыплят, получающих общий рацион.

Литература 1. Околелова, Т. Актуальные вопросы в кормлении птицы / Т. Околелова // Животноводство Росси, № 5. – 2009. – С. 21-22.

2. Парамонова, Т. Что ждет птицеводов в наступившем году? / Т.

Парамонова // Животноводство России, № 2. – 2009. – С. 14-15.

3. Фисинин, В.И. Рекомендации по кормлению с.-х. птицы / В.И.

Фисинин, И.А. Егоров, В.К. Менькин. – М.: ВНИТИП МСХА, 2003. - 143 с.

Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии УДК 599:539.1. особенности ПериФерического кроветворения цыПлят При обЩеМ гаММа-облУчении fEaturES pErIphEral Blood-crEatIoN chIckENS at thE gENEral gamma IrradIatIoN Вишняков А.И., Уварова Е.А.

Vichnyakov A.I., Uvarova E.A.

Оренбургский государственный университет Orenburg State University By us it is established that at an irradiation in a dose of 6,0 Gr in peripheral blood of chickens the relative and absolute maintenance lymphocytes decreased, it was marked relative and absolute pcevdoaeosinofiles, reduction of the maintenance of leukocytes and tromboocytes was observed.

В последние десятилетия в отечественной и мировой практике появляется все больше фактов о последствиях крупных радиационных катастроф: аварий на атомных электростанциях, ядерных испытаний, утечек радиоактивного топлива. Эта проблема приобретает особую актуальность в связи с тем, что на территориях, загрязненных радионуклидами, проживают большие контингенты людей, выращиваются сельскохозяйственные животные и птица [2].

Как известно, система крови является одной из самых радиочувствительных, так называемых «критических систем». В ряде случаев изменения в крови возникают при действии на организм сравнительно малых доз радиации и могут быть единственными диагностическими показателями лучевых заболеваний и их последствий.

Между тем, имеющиеся экспериментальные гематологические материалы получены в основном на лабораторных животных. Однако дозовые и временные параметры поражения и восстановления клеток крови не могут быть одинаковыми для всех животных, в том числе и для птицы, поскольку анализ дозовых зависимостей костномозговой гибели выявил значительные видовые различия [1].

Объектом исследования служили цыплята-бройлеры суточного возраста. Общее однократное гамма-облучение осуществлялось на телегамматерапевтической установке «Агат Р-1», при мощности дозы 0,6 Гр/ мин., в равномерном поле размером 0,2 х 0,2 м, расстояние от источника до поверхности – 0,75 м. В опыте птицу облучали в дозе 6,0 Гр. Гематологические показатели изучали общепринятыми методами. В стабилизированной гепарином или трилоном Б крови определяли содержание лейкоцитов, эритроцитов, тромбоцитов, процентное соотношение отдельных видов лейкоцитов. Показатели снимались в возрасте двух, пяти, семи, 15, 30, 45, 60 дней жизни цыплят.

Нами было установлено, что облучение гамма лучами в дозе 6,0 Гр вызывало у цыплят довольно значительные изменения в периферической крови (рис.1).

Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии Рис. 1. - Изменение некоторых показателей периферической крови цыплят под действием ионизирующего излучения При наличии глубоких сдвигов эритропоэза в костном мозге содержание эритроцитов, гемоглобина и цветной показатель у данной группы птицы оставались на протяжении всего опыта на том же уровне, что и у контрольных цыплят. Однако содержание тромбоцитов и, особенно, лейкоцитов после облучения цыплят резко снижалось: уже через сутки содержание тромбоцитов снизилось в 2,7 раза, лейкоцитов в два раза по сравнению с контролем.

Содержание этих форм клеток оставалось ниже фоновых показателей до 15 дневного возраста, в последующем их количество колебалось в одинаковых с контролем пределах. Снижение содержания лейкоцитов происходило, в основном, за счет лимфоцитов, количество которых в периферической крови понижалось через сутки после облучения почти в 10 раз, на пятый день содержание их у облученных цыплят увеличивалось в 5 раз, а уровня контроля их они достигали только через месяц после облучения.

Содержание псевдоэозинофилов в периферической крови у цыплят через сутки после их облучения в дозе 6,0 Гр резко возрастало как в относительном (72, %), так и в абсолютном (13,4*109/л против 10,6*109/л в контроле) выражениях, то есть наступал относительный и абсолютный псевдоэозинофилез, который, однако, довольно быстро снижался. Так, на пятый день после облучения при высоком процентном содержании (41,2 %) абсолютное количество псевдоэозинофилов было 8,85*109/л (в контроле – 6,63*109/л), а через 15 суток оно было уже ниже фоновых значений (7,05*109/л против 8,83*109/л). В последующем содержание их было близко к таковому у необлученных цыплят.

Увеличение количества псевдоэзинофилов у опытных цыплят через сутки после облучения возрастало за счет сегментоядерных форм (60,5 % при 22,0 % в контроле) и в меньшей степени за счет палочкоядерных (11,0 % при 6,0 % у здоровой птицы), то есть имел место выраженный сдвиг ядра псевдоэозинофилов вправо. Этот сдвиг удерживался и на пятый день после облучения, но в меньшей степени.

Через сутки после облучения в лейкоформуле опытных цыплят Таблица 1. Лейкоцитарная формула цыплят, облученных в дозе 6,0 Гр Возраст цыплят в днях 2 5 7 15 30 45 Лейкоцитарная формула Базофилы 0,5 0,2 0,2 0,2 - 0,5 0, Эозинофилы 6,5 2,5 1,9 1,0 2,0 1,5 1, Юные 1,0 0,2 0,3 0,7 0,5 0,4 0, Псевдо Палочкоядерные 11,0 4,5 4,2 4,0 3,3 2,5 1, эозинофилы Сегментоядерные 60,5 36,5 33,6 21,5 23,2 21,4 19, Лимфоциты 11,5 46,5 51,2 58,8 65,5 65,6 67, Моноциты 2,0 5,3 4,9 2,8 4,3 6,2 7, Клетки Тюрка 2,0 4,3 3,7 1,0 2,2 1,9 1, биологии и экологии Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии наблюодался несколько повышенный уровень содержания эозинофилов (6,5 % против 4,0 % в контроле), с пятого по 60-й день с В течение первых 15 суток после облучения отмечалось, так же, пониженное содержание моноцитов. В более поздние сроки после облучения оно колебалось в пределах, довольно близких к фоновым.

Исходя из вышеизложенного мы делаем вывод, что при облучении в дозе 6,0 Гр в периферической крови цыплят уменьшалось относительное и абсолютное содержание лимфоцитов, отмечался относительный и абсолютный псевдоэозинофилез, наблюдалось уменьшение содержания лейкоцитов и тромбоцитов.


Литература:

1. Сафонова В.А., Старых О.Н. Динамика общего числа лейкоцитов крови крыс при облучении на фоне применения эраконда // Вестник ветеринарии. Вып.

5. – Оренбург, 2002. – С. 187 – 189.

2. Топурия Г.М. Гипофункция щитовидной железы у телят в условиях загрязнения окружающей среды ксенобиотиками // Вопросы физико-химической биологии в ветеринарии: Сб. научных тр. / ФГОУ ВПО «МГАВМ и Б им. К.И.

Скрябина». – М., 2003. – С. 90 – 92.

УДК 619:616.98:578.842.1:577. выявление днк вирУса аФриканской чУМы свиней в ПродУктах животноводства.

afrIcaN SwINE fEvEr vIruS gENomE dEtEctIoN IN aNImal producE.

Газаев И.Х., Синдрякова И.П., Елсукова А.А., Шендрик А.Г., Цыбанов С.Ж Gazaev I.H., Sindryakova I.P., Elsukova A.A., Shendrik A.G., Tcibanov S.J.

Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии National Research Institute for Veterinary Virology and Microbiology The current article covers the research of possibility of ASFV genome detec tion in animal produce by PCR, especially in pork fat. The technique of experimen tation is presented. The ability of ASFV genome detection in pork fat is proved.

Эпизоотологическая обстановка последних лет характеризовалась многочисленными вспышками африканской чумы свиней на территории РФ (ноябрь 2007 - Чечня, апрель-май 2008 - Ингушетия, июль 2008 – Оренбургская область, октябрь 2008 - Ставрополье, ноябрь - Краснодарский край, март - Ростовская область, ноябрь 2009 - РСО Алания). В 2010 году продолжают регистрироваться вспышки в Краснодарском крае и Ставрополье. В марте г. к списку неблагополучных регионов присоединилась Кабардино-Балкарская республика.

Африканская чума свиней (АЧС, болезнь Монтгомери) высококонтагиозная болезнь, относящаяся к списку «А» по классификации Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии МЭБ и наносящая существенный экономический ущерб многим странам импортерам свинины. Появление АЧС вне эндемической зоны — это катастрофа для свиноводческой отрасли в силу ряда причин, таких как: высокая смертность в первичных очагах;

тотальный запрет на импорт свиноводческой продукции;

огромные затраты на сдерживание и ликвидацию инфекции;

потери в области сельскохозяйственных коммуникаций;

формирование природного очага.

Анализ эпизоотической ситуации по АЧС показывает, что распространение болезни происходит двумя путями:

- заносом возбудителя на ранее благополучные территории инфицированными вирусом АЧС кабанами;

- при несанкционированных перевозках продукции свиноводства и живых свиней из неблагополучных по этой болезни территорий.

Возможен занос заболевания с инфицированными кормами, транспортом, обслуживающим персоналом, предметами ухода, так же необеззараженными продуктами убоя больных свиней. [1.2] В настоящее время при лабораторной диагностике африканской чумы свиней наибольшее признание получили такие методы, как метод флюоресцирующих антител, реакция гемадсорбции и биопроба, позволяющие проводить прямую индикацию и специфическую идентификацию вирусного агента. Но приведенные методы имеют ряд недостатков, в том числе ограниченный спектр материалов, пригодных для исследования, значительные затраты времени и материальных средств, а также трудоемкость исполнения.

В ГНУ ВНИИВВиМ были разработаны тест-системы для выявления ДНК вируса АЧС методом ПЦР, и ПЦР в режиме реального времени. В отличие от перечисленных выше методов, ПЦР характеризуется быстротой и легкостью исполнения, возможностью работы практически с любым материалом и относительной дешевизной.

Эти методы были использованы нами, в том числе и для обнаружения генома вируса АЧС в сале. Для исследования использовали сало и шпик соленый, полученные из Ставропольского края.

При пробоподготовке материала мы столкнулись с трудностями получения суспензии из сала. По этому были приготовлены смывы из этих образцов при помощи добавления ТЕ буфера в соотношении 1:1 к исследуемому материалу, с инкубацией при температуре 64С в течение 5 мин, с последующим центрифугированием при 12 тыс. об,/мин в течение 5 минут.

Выделение проводили с помощью метода нуклеосорбции согласно методике выделения ДНК вируса АЧС. Выделенную ДНК использовали для постановки ПЦР.

Для амплификации последовательностей вирусной ДНК были использована пара праймеров, фланкирующая 485 п.о. фрагмента гена B646L, кодирующего основной капсидный белок P72. [3] Постановку ПЦР проводили на приборе Palm-Cycler фирмы Corbett Research при следующих температурных режимах: первый цикл - денатурация при 94 3 мин, затем 35 циклов (денатурация-94 19сек, отжиг 64 30сек и синтез при 72 16сек). Детекцию продуктов амплификации проводили в 2% агарозном геле с использованием этидиума бромида, методом горизонтального электрофореза. Результаты регистрировали при помощи гельдокументирующей системы Bio-Rad.

Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии Рис. 1. - Электрофореграмма (1 - сало, 2 - шпик соленый, 3 - К+, 4- маркер молекулярной массы 1000 п. о.) В ходе проведенной работы, нами были исследованы две пробы сала, одна из которых представляла собой соленый шпик, а вторая – несоленое сало.

После проведения ПЦР на электрофореграмме мы наблюдали специфический продукт реакции 485 п.о. Это свидетельствует о наличии генома вируса АЧС в исследованных образцах. Исходя из полученных данных, можно сделать вывод о том, что приведенная выше методика позволяет обнаружить ДНК вируса АЧС, как в пробах сала, так и пробах засоленного шпика.

Литература:

1. «Катастрофа для свиноводческой отрасли» // Ветеринария сельскохозяйственных животных, 2009.г. №3 с.9-12.

2. Козлова Д.И., Бесхлебнов В.А. Современные проблемы африканской чумы свиней. – М.: ВНИИТЭИСХ, 1980.- 60 с.

Копытов В.О., Цыбанова Л.Я., Селянинов Ю.О., Цыбанов С.Ж.

«Идентификация вируса африканской чумы свиней с помощью полимеразной цепной реакцией» // Генодиагностика инфекционных заболеваний. Сборник тезисов 4-ой Всероссийской научно-практической конференции, 2002г, Москва, с 341-343.

Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии УДК 577.1+619: динаМика геМатологических Показателей коров После ПриМенения ЭМУльсии для сосков выМени коров dyNamIcS of hEmatologIcal INdIcES cowS aftEr uSINg EmulSIoNS NIpplE uddEr Головин И.А.

Golovin I.A.

Ульяновская ГСХА Ulyanovsk State Agricultural Academy The article presents data on the effect of emulsion teat of cows on hemato logical indices. As a result of research the author has established the absence of influence emulsion teat of cows on hematological indices.

Воспаление кожи вымени, или дерматит, возникает в результате антисанитарного состояния животноводческих помещений и выгульных дворов, воздействия холода (обморожение, подмывания холодной водой) или тепла (ожог солнечными лучами, обмывание слишком горячей водой), а также вследствие укусов насекомых, травм, кормовых отравлений.

Лечение при травматических повреждениях кожи сосков вымени осуществляют путем промывания или орошения водными растворами перекиси водорода, калия перманганата, борной кислоты и др., а также наложение влажно-высыхающих повязок или тампонов, пропитанных гипертоническим раствором натрия хлорида, водным раствором фурацилина или риванола. Это, как правило, оказывает на кожные покровы раздражающее действие, иногда вызывает болевые ощущения. Как показала практика, применение мазей на основе антибиотиков или сульфаниламидных препаратов при трещинах кожи сосков вымени у коров способствует появлению штаммов микроорганизмов, устойчивых к данным лекарственным средствам. Это свидетельствует о том, что и профилактическая эффективность таких препаратов была или на низком уровне, или вовсе отсутствовала.

Для профилактики и лечения повреждений кожи сосков вымени коров в ОАО завод «Ветеринарные препараты» выпускается Эмульсия для сосков вымени коров с целью предохранения кожи от сухости, раздражения, образования трещин, заживления ран, ссадин, эрозий и дезинфекции сосков.

В связи с тем, что сведения о токсичности Эмульсии для предохранения кожи вымени коров от сухости, трещин, ран, ссадин и царапин отсутствуют, перед нами для исследования была поставлена следующая задача: изучить, в динамике гематологические показатели коров после применения этого препарата.

Таблица 1. Гематологические показатели коров после применения эмульсии антисептической После введения через (М+m) Показатели, До введения единица измерения 1 сутки 5 суток 15 суток 30 суток биологии и экологии 5,47+0,15 5,52 ±0,33 5,16 ±0,18 5,23 ±0,13 5,09 ±0, Эритроциты, х 1012 /л 5,38 ±0,03 4,97 ±0,19 4,93 ±0,17 5,07 ±0,12 5,04 ±0, Гемоглобин, 97,71 ±3,69 100,67 ±7,1 90,29 ±4,35 92,86 ±2,96 90,0 ±4, г/ л 94,67 ±6,67 97,67 ±5,21 86,07 ±4,11 95,33 ± 7,86 92,67 ±6, 7,95 ±0,77 8,13 ±1,57 6,74 ±0,44 7,93 ±0,048 8,49 ±0, Лейкоциты, х109 /л 8,13 ±1,45 7,61 ±1,6 7,83 ±0,65 8,43 ±1,03 7,13 ±0, Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, 1,44 ±0,22 1,56 ±0,21 1,66 ±0,14 1,14 ±0,14 1,34 ±0, СОЭ, Мм/ час 1,33 ±0,33 1,49 ±0,33 1,59 ±0,33 1,47 ±0,33 1,37 ±0, Примечание: в числителе приведены показатели после обработки, а в знаменателе показатели контрольной группы.

Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии Для изучения влияния Эмульсии антисептической (Antiseptic emulsion for udder teats of cows) на гематологические показатели крови были скомплектованы 2 группы коров 3-х летнего возраста. Перед применением эмульсию тщательно взбалтывали до образования однородной массы и после доения животных наносили 2 раза в сутки тонким споем (1,0-1,5 г) на каждый сосок вымени, слегка втирая в кожу легкими массажными движениями. Перед очередным доением проводили санитарную обработку вымени. В опытной группе (8 голов) препарат применяли в течение 6 дней, коровам контрольной группы (8 голов) применяли вазелин.


Для изучения влияния препарата на гематологические параметры коров нами были выбраны следующие показатели: количество эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина и скорость оседания эритроцитов (СОЭ). Кровь для исследования брали до применения препарата и на 1-е, 5-е, 15-е и 30-е сутки после применения. Изучение гематологических показателей проводили по общепринятым методикам [1, 2]. Данные экспериментальных исследований обрабатывали методом вариационной статистики. Для этой цели использовали прикладное программное обеспечение STATISTICA. Работу проводили согласно практическому руководству для пользователей [3]. Статистическую значимость различий устанавливали по величине критерия Стьюдента.

После применения препарата общее состояние животных было удовлетворительным: угнетение и явления токсикоза отсутствовали.

Результаты исследований по изучению влияния эмульсии для сосков вымени коров представлены в таблице 1.

Анализируя данные таблицы, можно отметить, что происходят определенные изменения количества эритроцитов, гемоглобина, лейкоцитов и СОЭ, однако эти колебания были статистически недостоверны. Эти данные свидетельствует о том, что эмульсия для сосков вымени коров не влияет на гематологические показатели крови.

ВЫВОД На основании комплекса проведенных гематологических исследований можно сделать заключение о том, что Эмульсия антисептическая для сосков вымени коров безопасна для коров, её применение не приводит к токсикозу и развитию патологических процессов в организме. Применение эмульсии не влияет на количество эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина и СОЭ коров.

Литература:

1.Клиническая лабораторная диагностика в ветеринарии: Справочное издание/И.П. Кондрахин, И.В.Курилов, А.Г.Малахов и др. – М.: Агропромиздат, 1985, с. 101-102.

2.Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики:

Справочник / под ред. проф. И. П. Кондрахина. – М.: КолосС, 2004 – С. 60-64, С. 465-466.

3.Солнцева О.В., Севастьянов А.В. Анализ статистических данных в пакете STATISTICA. Практическое руководство для пользователей.- Ульяновск, ГСХА, 2004- 43с.

Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии УДК 616.618.19:615.84, лечение Мастита У коз Увч тераПией.

Гришин И.И.,Судаков Н.Н., Семина Е.С.,Третьякова В.В., Пережегин В.В.

Рязанский государственный агротехнологический университет имени П.А. Костычева, RGATY In article the question of treatment of a mastitis at goats UHF is considered by therapy. Advantages of the given method consist in the following: the method is non-polluting, milk can be used in food without waiting the terminations of proce dures, treatment can make the trained personnel in unspecialized premises. The of fered installation works at voltage 24 V. It`s safely for the personnel and an animal.

Medical effect at an early stage of disease of 100 % for 2-3 days.

Одним из крупных товарных отраслей сельскохозяйственного производства является козоводство. Козы дают молоко, мясо, шерсть, пух и шкуру.

Коз содержат как в частных хозяйствах, так и в сельхозорганизациях и КФХ.

Козье молоко не только вкусно, это ещё и продукт, обладающий ценными целебными свойствами. В козьем молоке больше незаменимых жирных кислот и выше содержание жиров, которые намного легче усваиваются организмом.

Это поистине целебный напиток.

У козы вымя состоит из двух половин, отчетливо разделенных межвыменной бороздой, каждая половина вымени заканчивается соском. Соски имеют по одному сосковому каналу, длиной 0,5-0,8 см. В цистерну соска из вымени у козы открывается 6-12 крупных и мелких молочных протоков.

Вымя козы сильно отвисает к низу. По структуре и функциям не отличается от молочной железы коровы.

Подвижный образ жизни коз приводит к травмированию вымени, трещинам на сосках и др. К числу самых опасных болезней относится мастит, а также послеродовой отек. [1] Мастит - воспаление паренхимы и стромы молочной железы, развивающееся как следствие воздействия механических, термических, химических и биологических факторов. Наблюдается у всех сельскохозяйственных животных в любое время года. Конкретных причин возникновения маститов много, но их можно разделить на 2 основные группы: инфекционная и не инфекционная.

Из аномалий сосков, способствующих появлению маститов, наиболее распространенными являются дефекты верхушки сосков и сфинктера соскового канала - чрезмерная слабость и переразвитость, обуславливающая тугодойность.

Предрасполагающими к маститу условиями являются нарушение зоотехнических норм кормления животных, антисанитарные условия содержания и ухода, отсутствие моциона, неудовлетворительное состояние Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии микроклимата помещений, общие заболевания животных, гормональное влияние, а также наследственная предрасположенность. К неинфекционным причинам возникновения маститов относят травмы тканей вымени, в частности ушибы, уколы, трещины кожи вымени и сосков, ранения, травмы вымени и сосков, наносимые молодняком и другие воздействия физиологических и химических факторов - раздражение тканей вымени кислотами и щелочами, раздражающими мазями при втирании;

ожоги, переохлаждения, обморожения.

Маститы представляют собой не только местный процесс, происходящий в тканях пораженной части вымени, но и сопровождаются более или менее ярко выраженной реакцией всего организма, проявляющейся в его угнетении, понижении аппетита, нарушении функций желудочно-кишечного тракта и сердечно-сосудистой системы, повышении температуры тела и т.д.

Лечение мастита заключается в проведении ряда мероприятий, основной задачей которых является повышение защитных сил организма и устранение предрасполагающих к маститу факторов. Ветеринарные специалисты при лечении маститов учитывают ведущий этиологический фактор и те изменения, которые произошли под его влиянием.

Сегодня имеется масса различных методов терапии сельскохозяйственных животных, больных маститом. Схема лечебного применения при мастите конкретизируется для каждого больного животного с учетом характера воспаления и течения процесса. В основном все эти методы медикаментозные.

Проанализировав причины возникновения маститов и их лечение можно сделать вывод, что заболеванию подвержены высокопродуктивные животные, в наилучший период лактации. Лечение проводится, в основном, медикаментозными средствами и методами, что приводит к выбраковке молока.

Высокая стоимость медицинских препаратов, дополнительные потери молока из – за сроков их выведения из организма, значительные затраты на труда заставляют искать более эффективные методы и экологически чистые средства лечения животных.

К таким методам лечения маститов относятся физиотерапевтические методы. При маститах у животных с успехом применяют различные средства и методы физиотерапии: охлаждающие и тепловые процедуры, свето-, электро и ультразвуковую терапию, массаж вымени. Своевременное применение физиотерапевтических методов оказывается часто более эффективным, чем использование медикаментозных препаратов.[1,3] В процессе применения средств физиотерапии в ветеринарии возникает ряд особенностей, связанных с лечением животных. Это агрессивная среда, повышенная влажность животноводческих помещений, проблемы дозы лечения, защита животных и персонала от поражения электрическим током - некоторые вопросы требуют решения при использовании физиотерапевтического оборудования в ветеринарии.

Применение УВЧ терапии для лечения животных позволяет проводить лечение с наименьшими затратами труда и потерями продукции. Метод является экологически чистым и не требует квалифицированного специалиста для проведения процедур.[2] Коллектив ученых под руководством академика Прищеп Л.Г. разработали УВЧ установку для лечения мастита у коров в процессе машинного доения. [5] Нами предложена высокочастотная облучающая система для лечения Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии мастита у коз на базе ЛПДА – 2 УВЧ. [2,4] Рис. 1. – Структурная схема УВЧ – установки.

Она состоит из блока питания, который преобразует переменное напряжение 220В в постоянное – 24В, что безопасно для персонала и животного.

Генератора, высокочастотной энергии вырабатывающего напряжение с частотой 40,68 МГц, ± 0,5%. Данная частота используется в медицине. В генераторе предусмотрена защита от режимов короткого замыкания и холостого хода на выходе согласующего устройства. По высокочастотному кабелю РК – 50 энергия подводится к согласующему устройству, которое симметрирует ВЧ энергию и передает к терапевтической нагрузки. Структурная схема УВЧ – установки представлена на рис. 1.

Разработана модель терапевтической нагрузки, представляющей собой высокочастотный излучатель, состоящий из двух поверхностей конический формы одетых на соски вымени козы. Расчет дозы был определен в ходе исследований. Время и мощность проведения процедуры 10 минут и 10Вт соответственно.

Были проведены исследования работоспособности установки при разных режимах, которые показали, что лечебный аппарат работает на всех выбранных режимах устойчиво, обеспечивает заданную выходную мощность, при вариации нагрузки в пределах ± 3u.

Выздоровление при раннем заболевании маститом составляет 100%.

Достоинства данного метода заключаются в том, что молоко не выбраковывается, его можно использовать еще до выздоровления животного.

Метод является экологически чистым и не требует квалифицированного специалиста для проведения процедур.

Литература:

1. А.И.Ерохин, В.В.Соколов, Г.А.Куц, В.Д.Хромченков, В.И.Задумина Козоводство – М.: исд-во МСХА, 2001.- 208 с.

2. Ливенсон А.Р. Электробезопасность медицинской техники. – М.: – 92с.

3. А.П.Студенцев, В.С.Шипилов Акушерство, гинекология и биотехника Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии размножения животных. – М.: КолосС, 2005.- 512с.

4. Г.Л.Франкель, Ф.С.Белицкая Руководство по дизометрии и изменению поля ультровысокой частоты. – Изд. Ленинградского физиотерапевтического института. 1940.

5. Прищеп Л.Г., и др. Профилактика и лечение маститов у коров в процессе машинного доения. Тезисы докладов УШ Симпозиума по машинномы доению сельскохозяйственных животных. – Оренбург, 1995. – с.54.

УДК 619:616-091:636.5.087. МорФологические изМенения в ПоджелУдочной железе Молодняка кУр При Моновакцинации Против вирУсных болезней Громов И.Н.

Gromov I.N.

Витебская ордена «Знак Почета» государственная академия ветеринарной медицины The Vitebsk State Academy of Veterinary Medicine It is positioned, that inactivated oil-emulsion vaccine against infectious lar yngotracheitis invokes development in a pancreatic gland short vacuolar and futty dystrophia. Application of vaccines against an infectious bronchitis and disease of Newcastle invokes weakly expressed morphological rearrangement in a pancreatic gland. Under the influence of a vaccine against infectious bursal disease in a pan creatic gland of auks educe a short vacuolar dystrophia of cells, and also limfoid and makrofagal infiltration of an organ with formation of lymphoid nodules.

Изучению морфологии иммунной системы птиц в норме и при патологии посвящено значительное количество работ ряда исследователей. Установлено, что отсутствие сформированных лимфатических узлов у птиц компенсируется достаточно высоким уровнем развития лимфоидной ткани в селезенке [7, 8], органах желудочно-кишечного тракта (глоточная, пищеводная и слепокишечные миндалины, дивертикул Меккеля) [9, 10, 12, 14], органа зрения (слезная и железа Гардера) [11, 13] и др. систем органов. Очаговые и диффузные скопления лимфоидной ткани выявляются в слизистой оболочке бронхов, в соединительной ткани парабронхов [4, 6]. Лимфоидная ткань также выявлена в скелетной мускулатуре, миокарде, эндокринных и половых органах, почках, печени, в том числе и в поджелудочной железе [7, 8].

Исследований по изучению морфологии поджелудочной железы при вакцинации птиц не проводилось. В то же время известно, что вакцинные препараты, попадая во внутреннюю среду, наряду с иммунобиологической перестройкой вызывают комплекс адаптационных реакций, отражающих кратковременное расстройство гомеостаза. Вакцинный процесс, Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии обусловленный введением специфических профилактических препаратов, является отражением сложного по характеру взаимодействия макроорганизма и антигена и не ограничивается только изменениями со стороны иммунной системы. Практически все органы и системы организма участвуют в создании особого состояния – иммунологической перестройки [2, 3]. Поэтому изучение морфологических изменений в неиммунных органах птиц при вакцинации является, по нашему мнению, одним из критериев оценки остаточной реактогенности биопрепаратов.

Учитывая вышеизложенное, целью наших исследований явилось изучение динамики структурных изменений в поджелудочной железе у молодняка кур, вакцинированных против инфекционного бронхита (ИБК), инфекционной бурсальной болезни (ИББ), инфекционного ларинготрахеита (ИЛТ) и болезни Ньюкасла (БН) инактивированными моновалентными вакцинами, разработанными в ФГУ ВНИИЗЖ и ИЭВ им С.Н. Вышелесского НАН Беларуси.

Исследования были проведены в серии из 4 опытов. Для иммунизации ремонтного молодняка кур применяли следующие биопрепараты:

• жидкую инактивированную эмульсин-вакцину ФГУ ВНИИЗЖ против ИБК (1 опыт);

• жидкую инактивированную эмульгированную вакцину против ИЛТ, разработанную в ИЭВ им. С.Н. Вышелесского НАН Беларуси (2 опыт);

• жидкую инактивированную эмульсин-вакцину ФГУ ВНИИЗЖ против БН (3 опыт);

• жидкую инактивированную эмульгированную вакцину против ИББ, разработанную в ИЭВ им. С.Н. Вышелесского НАН Беларуси (4 опыт);

При проведения исследований в каждом опыте было отобрано 400 голов молодняка кур 130-158-дневного возраста. Вся птица была разделена на группы (по 200 голов в каждой). Молодняк кур 1 группы иммунизировали одной из моновакцин. Интактная птица 2 группы служила контролем. Иммунизацию птиц в 1-4 опытах проводили согласно Наставлениям по применению вакцин, однократно, в 130-дневном возрасте, внутримышечно, в дозе 0,5 мл. На 3, 7, 14, 21 и 28 дни после вакцинации по 4-5 птиц из каждой группы убивали. Во все сроки исследований проводили контрольное взвешивание подопытной птицы, определяли линейные размеры, абсолютную массу и индекс поджелудочной железы. Взвешивание органа проводили на электронных весах “Scout Pro SPU 202” фирмы “Ohaus Corporation” (США).

Для изучения морфологических изменений отбирали кусочки поджелудочной железы фиксировали в жидкости Карнуа, 10%-ном растворе формалина. Обезвоживание и парафинирование кусочков железы проводили с помощью автомата для гистологической обработки тканей «MICROM STP 120»

(Германия) типа «Карусель». Для заливки кусочков и подготовки парафиновых блоков использовали автоматическую станцию «MICROM EC 350».

Гистологические срезы кусочков поджелудочной железы, залитых в парафин, готовили на санном и маятниковом микротоме «MICROM HM 340 E».

Для изучения общих структурных изменений гистологические срезы окрашивали гематоксилин–эозином, для выявления коллагеновых и эластических волокон – по Маллори и Гейденгайну, для обнаружения гликогена – по Шабадашу, для выявления аскорбиновой кислоты – по Жиру и Леблону, Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии для определения нуклеиновых кислот – метиловым зеленым - пиронином по Браше [1, 5]. Гистологическое исследование проводили с помощью светового микроскопа «OLYMPUS BX51». Полученные данные документированы микрофотографированием с использованием цифровой системы считывания и ввода видеоизображения «ДСМ-510», а также программного обеспечения по вводу и предобработке изображения «Imagescope–M» и «ScopePhoto».

Цифровые данные обработаны статистически с использованием программы Microsoft Excel 2003.

Результаты исследований в 1 опыте показали, что поджелудочная железа интактных и иммунных птиц во все сроки исследований имела нормальную величину и форму, упругую консистенцию, желто–розовый цвет, выраженный дольчатый рисунок на разрезе. Изменения органометрических показателей данного органа у подопытных птиц носили волнообразный характер. Так, на 3 и 7 дни после вакцинации абсолютная масса и индекс органа возрастали по сравнению с контрольными данными на 10–18%. На 14 и 21 дни эксперимента указанные показатели нормализовались по сравнению с контролем, а к 28 дню – снова увеличивались на 12–40%. При этом различия не были достоверными.

Линейные размеры железы в течение эксперимента изменялись несущественно.

При гистологическом исследовании поджелудочной железы интактных и подопытных птиц во все сроки исследований значимых структурных изменений выявлено не было.

Следовательно, использование инактивированной эмульсин–вакцины против ИБК не оказывает существенного влияния на морфологию поджелудочной железы птиц.

Во 2 опыте нами были изучены закономерности морфологической перестройки поджелудочной железы молодняка кур при вакцинации против ИЛТ жидкой инактивированной эмульгированной вакциной, разработанной в ИЭВ им. С.Н. Вышелесского НАН Беларуси.

При изучении органометрических показателей установлено, что на 3, 7 и 14 дни после вакцинации абсолютная масса железы у птиц 1 группы снижались по сравнению с контролем на 8–36% (P0,05). Индекс и линейные размеры органа также уменьшались. На 21 и 28 дни эксперимента абсолютная масса и индекс поджелудочной железы молодняка кур 1 группы превышали контрольные значения на 6–37%. При этом различия не были достоверными. При гистологическом исследовании поджелудочной железы интактного молодняка кур во все сроки исследований существенных изменений в экзо– и эндокринном отделах выявлено не было.

У подопытных птиц на 3 и 7 дни эксперимента отмечались признаки мелкокапельной жировой и вакуольной дистрофии эпителиальных клеток ацинусов. В интерстициальной ткани регистрировался серозный отек, инфильтрация единичными лимфоцитами. На 14 день опыта у вакцинированных птиц происходило полное восстановление паренхимы железы. В отдаленные сроки исследований гистологические изменения в ацинусах и островках Лангерганса не обнаруживались.

Итак, при использовании жидкой инактивированной эмульсин–вакцины против ИЛТ в поджелудочной железе вакцинированных птиц отмечается непродолжительная гидропическая и жировая дистрофия панкреацитов.

Изменение органометрических показателей железы в ответ на введение Том IV. Актуальные вопросы ветеринарной медицины, биологии и экологии указанной вакцины носит волнообразный и недостоверный характер.

На 3 этапе мы изучили закономерности морфологической перестройки в поджелудочной железе у молодняка кур, вакцинированных против болезни Ньюкасла с использованием жидкой инактивированной эмульгированной вакцины, разработанной в ФГУ «ВНИИЗЖ».

Изучение органометрических показателе показало, что на 3 и 7 дни эксперимента её абсолютная масса, индекс и линейные размеры железы у птиц 1 и 2 групп были примерно одинаковыми. На 14 день после вакцинации индекс и линейные размеры железы у иммунного молодняка кур оставались неизменными, а абсолютная масса органа увеличивалась, по сравнению с контролем, в 1,2 раза (P0,05). На 21 день опыта абсолютная масса железы птиц 1 группы нормализовалась по сравнению с контрольными значениями, а на день эксперимента снова возрастала на 24%.

Микроскопическим исследованием поджелудочной железы интактных птиц 2 группы во все сроки исследований существенных структурных изменений в строме, ацинусах и островках Лангерганса выявлено не было.



Pages:   || 2 | 3 | 4 | 5 |   ...   | 8 |
 



Похожие работы:





 
© 2013 www.libed.ru - «Бесплатная библиотека научно-практических конференций»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.