авторефераты диссертаций БЕСПЛАТНАЯ БИБЛИОТЕКА РОССИИ

КОНФЕРЕНЦИИ, КНИГИ, ПОСОБИЯ, НАУЧНЫЕ ИЗДАНИЯ

<< ГЛАВНАЯ
АГРОИНЖЕНЕРИЯ
АСТРОНОМИЯ
БЕЗОПАСНОСТЬ
БИОЛОГИЯ
ЗЕМЛЯ
ИНФОРМАТИКА
ИСКУССТВОВЕДЕНИЕ
ИСТОРИЯ
КУЛЬТУРОЛОГИЯ
МАШИНОСТРОЕНИЕ
МЕДИЦИНА
МЕТАЛЛУРГИЯ
МЕХАНИКА
ПЕДАГОГИКА
ПОЛИТИКА
ПРИБОРОСТРОЕНИЕ
ПРОДОВОЛЬСТВИЕ
ПСИХОЛОГИЯ
РАДИОТЕХНИКА
СЕЛЬСКОЕ ХОЗЯЙСТВО
СОЦИОЛОГИЯ
СТРОИТЕЛЬСТВО
ТЕХНИЧЕСКИЕ НАУКИ
ТРАНСПОРТ
ФАРМАЦЕВТИКА
ФИЗИКА
ФИЗИОЛОГИЯ
ФИЛОЛОГИЯ
ФИЛОСОФИЯ
ХИМИЯ
ЭКОНОМИКА
ЭЛЕКТРОТЕХНИКА
ЭНЕРГЕТИКА
ЮРИСПРУДЕНЦИЯ
ЯЗЫКОЗНАНИЕ
РАЗНОЕ
КОНТАКТЫ


Pages:   || 2 | 3 | 4 | 5 |   ...   | 8 |
-- [ Страница 1 ] --

РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ НАУК

МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РФ

РОССИЙСКИЙ ФОНД ФУНДАМЕНТАЛЬНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

ИНСТИТУТ БИОХИМИИ И ФИЗИОЛОГИИ РАСТЕНИЙ И

МИКРООРГАНИЗМОВ РАН

ИНСТИТУТ ФИЗИОЛОГИИ КОМИ НАУЧНОГО ЦЕНТРА

УРАЛЬСКОГО ОТДЕЛЕНИЯ РАН

ИНСТИТУТ ХИМИИ КОМИ НАУЧНОГО ЦЕНТРА УРАЛЬСКОГО

ОТДЕЛЕНИЯ РАН

САРАТОВСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ИМ. Н.Г.

ЧЕРНЫШЕВСКОГО

III Всероссийская конференция ХИМИЯ И ТЕХНОЛОГИЯ РАСТИТЕЛЬНЫХ ВЕЩЕСТВ Тезисы докладов САРАТОВ 7-10 сентября, 2004 САРАТОВ ИЗДАТЕЛЬСТВО САРАТОВСКОЙ ГУБЕРНСКОЙ ТОРГОВО-ПРОМЫШЛЕННОЙ ПАЛАТЫ 2004 III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г III Всероссийская конференция «ХИМИЯ И ТЕХНОЛОГИЯ РАСТИТЕЛЬНЫХ ВЕЩЕСТВ» ТЕЗИСЫ ДОКЛАДОВ 7-10 сентября 2004 г.

Научное издание Тезисы воспроизведены без редактирования с согласия авторов Редакционная коллегия д.б.н. профессор В.В. Игнатов к. б. н. Н.Ю. Селиванов к.б.н. О.Г. Шкодина Издано при финансовой поддержке:

Российского Фонда Фундаментальных Исследований (грант 04-03-42055) Министерства образования и науки (грант 02-42-03) ©Институт биохимии и физиологии растений и микроорганизмов РАН. (г.Саратов) Обложка рисунок Хруцкого Ивана Фомича Натюрморт, 1842г. Масло, холст 67х85.

Из фондов Саратовского государственного музея им. А.Н. Радищева III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г СОДЕРЖАНИЕ СЕКЦИЯ «ХИМИЯ И ТЕХНОЛОГИЯ РАСТИТЕЛЬНЫХ БИОПОЛИМЕРОВ»

Пленарные доклады Оводов Юрий Семенович, Р.Г. Оводова, С.В. Попов, О.А. Бушнева, В.В. Головченко, Е.А. Гюнтер, Е.А. Елькина, А.Я. Полле, О.В. Попейко, Г.Ю. Попова, А.А. Шубаков Пектиновые вещества ряда растений европейского Севера России, их строение и свойства Усов Анатолий Иванович Подходы к структурному анализу нерегулярных и частично регулярных полисахаридов (на примере полисахаридов водорослей) Устные доклады Р.Г. Оводова, Бушнева Ольга Андреевна, А.С. Шашков, А.О.Чижов Пектин сабельника болотного Comarum palustre L Р.Ю. Козлова, Винтер Виктор Георгиевич, Р.Г. Оводова, Д.И. Якушев, В.А. Поддубный Влияние пектинов, полученных из клеток раувольфии змеевидной, на синтез алкалоидов Выштакалюк Александра Борисовна, А.Н.Карасева, В.Ф.Миронов, В.В. Карлин, С.Т. Минзанова, В.В.

Зобов, А.В. Ланцова, В.Р. Албутов Сравнение фармакологического действия полиметаллических комплексов пектиновых полисахаридов с противоанемическими препаратами Е.Н. Медведева, Колзунова Лидия Глебовна, В.А. Бабкин, Ю.А. Малков, Л.А. Остроухова, Н.А.

Онучина, Л.А. Еськова Совершенствование технологии получения арабиногалактана Медведева Светлана Алексеевна, Г.П. Александрова, Л.А. Грищенко, И.А. Антипова, С.А. Муха, Б.Г.

Сухов, Б.А. Трофимов Природные синтоны для создания новых биологически активных соединений Минзанова Салима Тахиатулловна, А.Н.Карасева, В.Ф.Миронов, В.В. Карлин, А.Б. Выштакалюк Получение водорастворимых комплексов пектиновых биополимеров с двухвалентными s металлами Селиванов Николай Юрьевич, О.Г. Шкодина, А.А. Галицкая, В.А. Богатырев, В.В. Игнатов Проточный ферментолиз пектиновых полисахаридов Стендовые доклады Билан Мария Ивановна Химическая характеристика фукоиданов из фукусовых водорослей Fucus distichus L. и Fucus serratus L.

Гюнтер Елена Александровна, О.В. Попейко, Ю.С. Оводов Выделение и характеристика полисахаридов из клеточной культуры Lemna minor L.

Елькина Елена Андрияновна, Е.А. Новикова, А.А. Шубаков Выделение и изучение моносахаридного состава полисахаридов из семян зерновых культур Земнухова Л.А., Шкорина Екатерина Дмитриевна, Томшич С.В., Г.А. Федорищева, Полисахариды из отходов производства гречихи Костыро Яна Антоновна, С.А. Медведева Сульфатированные производные арабиногалактана – новые фармакологически активные соединения Минзанова Салима Тахиатулловна, А.Н. Карасева, В.Ф. Миронов, Э.А. Гурылев, К.О. Синяшин, А.Б.Выштакалюк, В.В. Карлин, Г.Р. Петрова, Л.Г. Миронова, А.З. Миндубаев Количественное определение содержания кобальта и меди в комплексах пектиновых биополимеров Смирнова Галина Павловна, А.И Усов Полисахаридный состав бурых водорослей рода Alaria III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г СЕКЦИЯ «ХИМИЯ И ТЕХНОЛОГИЯ ВТОРИЧНЫХ РАСТИТЕЛЬНЫХ МЕТАБОЛИТОВ»

Пленарные доклады Кучин Александр Васильевич, Л. Л. Фролова, И.Н. Алексеев С. М. Гердов, Ю.К. Гришин, Ю.А. Устынюк Синтез энантиомерно чистых монотерпеноидов и исследование распределения дейтерия в них методом количественной спектроскопии ЯМР 2H Толстиков Александр Генрихович, В.А. Глушков, Г. Казанбаева Дегидроабиетиновая кислота как объект целенаправленных химических трансформаций Шульц Эльвира Эдуардовна, С.В. Чернов, Ю.В. Харитонов, Г.А. Толстиков Синтез гетероциклических производных дитерпеноидов на основе ламбертиановой кислоты Устные доклады Альфонсов Владимир Алексеевич, В.Е.Катаев Изостевиол из растения Stevia rebaudiana Bertoni в органическом синтезе Борисова Надежда Владимировна, С.Р. Кушнир, Б.А. Радбиль Термическое разложение дегидроабиетилизоцианата Ведерников Дмитрий Николаевич, Н.Ю.Шабанова, Н.Г Галашкина, Н.Л. Карачкина, В.И.Рощин Необычные терпеноиды березы повислой Betula pendula Roth Зеленков Валерий Николаевич, М.В.Марков Кремнефильность растений участка «Активная» дачных гидротермальных источников мутновского вулкана Земнухова Людмила Алексеевна, Г.А. Федорищева, А.Г. Егоров, В.И. Сергиенко Свойства аморфного диоксида кремния из растительного сырья Клабукова Ирина Николаевна, А.Н. Кислицын, А.Н. Трофимов Исследование каталитического окисления -пинена в присутствии уксусной кислоты, изопропанола, бензальдегида, метилэтилкетона и окислов металлов переменной валентности Ковыляева Галина Ивановна, О. И. Милицина, И. Ю. Стробыкина, В. Е. Катаев, В. А. Альфонсов, Р. З.

Мусин, Д. В. Бескровный, И. А. Литвинов Превращение оксима изостевиола в лактон в условиях реакции Бекмана Патов Сергей Александрович, А.В. Кучин Синтез розавина - гликозида Rhodiola rosea L.

Племенков Виталий Владимирович, С.А. Апполонова, Д.А. Кирлица К вопросу о нативном содержании смоляных кислот в живицах хвойных Шкапова Юлия Александровна, А.Б. Радбиль, А.В. Гущин, Б.А. Золин Кислотно-каталитическое алкоксилирование камфена Стендовые доклады Белых Дмитрий Владимирович, А.В.Рочева Гидролиз сложноэфирных групп амидных производных хлорина е Буравлёв Евгений Владимирович, И.Ю. Чукичева, Л.В. Спирихин, А.В. Кучин Некоторые трансформации орто-изоборнилфенола Волчо Константин Петрович, О.И. Яровая, С.Ю. Курбакова, Д.В. Корчагина, Н.Ф. Салахутдинов, В.А. Бархаш Взаимодействие эпоксидов цитраля с малононитрилом на основном цеолите cs Г.Ф.Казанбаева, В.А.Глушков Синтез оснований Шиффа на основе метил-12-амино-дегидроабиетата Дворникова Ирина Александровна, Л.Л. Фролова, А.В. Кучин Лиганды саленового типа на основе энантиомерно чистого 2-гидрокси-3-пинанона Журинова Татьяна Александровна, А.Б. Радбиль, Б.А. Радбиль, Е.П. Кулагин Сополимеризация альфа-пинена со стиролом и его производными в присутствии кислот Льюиса III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г И.А. Вакуленко, Л.Е. Никитина, В.А. Старцева, Племенков Виталий Владимирович, Л.Л. Фролова, А.В. Кучин Синтез терпенсульфидов на основе цис-вербенола Саломатина Оксана Владимировна, М. П. Половинка, Д.В. Корчагина, В.А. Бархаш Биомиметические превращения диэпоксидов R-(+)-лимонена.

И.Г. Судакова, Кузнецов Борис Николаевич Синтез и исследование пленкообразующих материалов из суберина березы Казаков Павел Николаевич, С.А. Рубцова, А.В. Кучин Синтез и окисление терпеновых сульфидов борнановой и ментановой структуры Карасева Алла Николаевна, Миронов В.Ф., Карлин В.В., Минзанова С.Т., Лагоденко М.В., Щербаков В.Н., Гинс В.К., Кононков П.Ф.

Содержание сквалена в маслах семян амаранта сортов «Валентина» и «Сэм»

Карасева Алла Николаевна, Миронов В.Ф., Карлин В.В., Минзанова С.Т., Логоденко М.В.,Щербаков В.И., Гинс В.К., Кононков П.Ф.

Статистические данные по составу нейтральных и кислотных компонентов масла семян амаранта «Кизлярец»

Ковыляева Г. И., О. И. Милицина, И. Ю. Стробыкина, В. Е. Катаев, В. А. Альфонсов, Р. З. Мусин, Д. В. Бескровный, И. А. Литвинов Неожиданное течение бекмановской перегруппировки 16-оксима изостевиола приводит к образованию лактона Куприянович Юлия Николаевна, С.А. Медведева, А.В. Рохин Структурные особенности дегидрополимеров на основе моно- и ди- замещенных фенолов Н.Г.Беленкова, Комиссарова Наталия Григорьевна, О.В.Шитикова, Л.В.Спирихин, М.С.Юнусов Синтез конденсированных с гем-дихлорциклопропаном производных ряда лупана Некрасов Денис Денисович, В.М. Балобанов, Р.В. Кобелев, А.Г. Толстиков Синтез ароилпируватов бетулина и оксима аллобетулона с потенциальной биологической активностью Ноговицина Екатерина Михайловна, Гришко В.В., Ившина И.Б.

Трансформация сложных эфиров -ситостерола под воздействием штамма Rodococcus erythropolis ИЭГМ Погодаева Наталья Николаевна, С. В. Федоров, Л.В. Каницкая, А.А. Семенов Флавоноидные олигозиды из Aconitum barbatum Pers Пунегов Василий Витальевич, С.А. Патов, Р.Л. Сычёв, Е.А. Туманова Электрохимическая трансформация -пинена в нестационарном поле импульсного тока как способ получения кислородсодержащих монотерпеноидов Cаломатина Оксана Владимировна, М. П. Половинка, Д.В. Корчагина, В.А. Бархаш Биомиметические превращения диэпоксидов R(+)-лимонена Сиразиева Елена Владимировна, В.А. Старцева, Л.Е. Никитина, В.В. Племенков Гетеролитическое присоединение сульфидных реагентов к (-)-карвону Стробыкина Ирина Юрьевна, О.И. Милицина, Г.И. Ковыляева, Г.А. Бакалейник, В.Е. Катаев, В.А. Альфонсов, Р.З. Мусин, Д.В. Бескровный, И.А. Литвинов Салицилальдимины изостевиола Субботина Светлана Николаевна, С.А.Рубцова, А.В. Кучин Синтез и окисление тиоланов с терпеновыми радикалами Т.И. Когай, Кузнецов Борис Николаевич, В.А. Левданский Усовершенствованный метод синтеза бетулиновой кислоты из бетулина Танцырев Анатолий Петрович, Л.В. Каницкая, Г.Г. Левковская Диметилгидразоны углеводов Третьякова Е. В., О. Б. Флехтер, Ф. З. Галин, Г. А. Толстиков Синтез производных фенил-2,3-оксазинов из хризенхинонкарбоновой кислоты Хайритдинова Эльвира Дарвитовна, Е.М. Цырлина, Л.В. Спирихин, М.С. Юнусов Восстановительное сочетание секопроизводных дитерпеновых алкалоидов Чукичева Ирина Юрьевна, И.В.Тимушева, Л.В. Спирихин, А.В. Кучин Алкилирование пирокатехина камфеном Дудакова Татьяна Владимировна, А.М. Коротеев, К. А. Лысенко, Э.Е. Нифантьев Исследование фосфорилирования некоторых флавоноидов III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г В.Л.Мамедова, К.А.Никитина, В.А.Мамедов, В.А.Альфонсов, В.Е.Катаев Реакция производных 15-галогенизостевиола с триалкилфосфитами Пантелеева М.В., Фролова Л.Л.,Кучин А.В., Ипатова Е.У.

Синтез энантиомеров 2,3-борнандиола Тагир М. Габбасов, Е.М. Цырлина, Л.В. Спирихин, В.Т. Данилов, М.С. Юнусов Уралин-новый нордитерпеновый алкалоид из наземной части растения Delphinium uralense СЕКЦИЯ «СТРУКТУРА, ФУНКЦИИ И БИОЛОГИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ СОЕДИНЕНИЙ РАСТИТЕЛЬНОГО ПРОИСХОЖДЕНИЯ»

Пленарные доклады Балтина Лидия Ашрафовна, О.Б.Флехтер, Р.М.Кондратенко, Н.И.Медведева, Л.Р.Михайлова, Ф.З.Галин, В.В.Поройков, Е.И.Бореко, А.Г.Покровский, Н.Ж.Басченко, Г.А.Толстиков, О.Кунерт Дизайн, синтез и оценка биологической активности новых производных и аналогов растительных тритерпеновых веществ Семенов Аркадий Алексеевич, Растительные регуляторы гомеостаза и новый подход к лечению инфекционных, аутоиммунных и пролиферативных заболеваний Устные доклады Каримова Альбина Рубилевна, С. Г. Юнусова, М. С. Юнусов Биологически активные компоненты семян калины обыкновенной Карманова Людмила Павловна, А.В. Кучин, А.А.Королева, В.А. Кучин Экстрактивные вещества из видов Abies - стимуляторы роста растений Козлова Регина Юрьевна, Кучин А.В., Винтер В.Г.

Тритерпеновые кислоты как регуляторы специализированного обмена растительных клеток Кузнецов Павел Евгеньевич, О.А. Арефьева Молекулярное моделирование в исследовании структурных основ активности растительных соединений Кузнецова Ольга Юрьевна, М.А. Сысоева, В.С. Гамаюрова, Г.К. Зиятдинова, Г.К. Будников Антиоксидантная активность водных извлечений и полифенолов чаги Лапин Анатолий Андреевич, Г.К. Зиятдинова, Ю.В.Чугунов, Влияние растительных полисахаридов на минеральный состав и антиоксидантную емкость плазмы крови Лихацкая Галина Николаевна, М. М. Анисимов, В. Е. Киласкин, Н.И. Уварова, И.Б. Крыжко, Е. В.

Трифонов, Е. А. Нурминский Компьютерное моделирование в исследовании механизма противовирусного действия бетулиновой кислоты и ее кликозидов Неретина Ольга Владимировна, А.С. Громова. В.И. Луцкий, А.А Семенов, И.А. Ушаков Химический состав и биологическая активность вторичных метаболитов Hedysarum setigerum Turcz. ex Fisher et Meyer Сорокина Ирина Васильевна, Н.А. Жукова, Е.Б. Волкова, Т.Г. Толстикова, Э.Э. Шульц, С.В.

Позднякова, О.Р. Грек Новые пептидные производные бетулоновой кислоты- корректоры токсических эффектов цитостатиков Толстикова Татьяна Генриховна, А.О. Брызгалов, И.Л. Коваленко, И.В. Сорокина, С.Е. Толстиков, В.А. Альфонсов Влияние клатратообразования на свойства фармаконов в комплексах с различными растительными гликозидами Стендовые доклады Т.Д. Четверикова, С.А. Медведева, Александрова Галина Петровна, И.М. Красникова, Л.А. Грищенко Оценка противоанемической активности ферроарабиногалактана Антипова Ирина Арсеньевна, С.А. Муха, С.А. Медведева, Б.Г. Сухов Мальтол - перспективный природный -пироновый синтон для получения биологически активных соединений III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г Белопухов Сергей Леонидович Действие физиологически активных веществ на рост и развитие льна-долгунца Linum usitatissimum L.

Елькина Елена Андрияновна, А.А. Шубаков Регуляция роста овощных культур экзогенными растительными полисахаридами Карманов Анатолий Петрович, М.Ф. Борисенков, Л.С.Кочева, А.А. Шубаков, М.А. Вайкшнорайте, А.М. Канева Природные лигнины как основа онкопротекторных энтеросорбентов Прокофьева Нина Григорьевна, П.А. Лукъянов, Е.Л. Чайкина, М.М. Анисимов, Н.Ф. Самошина, М.В. Денисенко, Н.И. Уварова Биологическая активность тритерпеноидов лупанового ряда Прошева Валентина Ивановна, А.И. Вислобоков, А.Я Полле Эффекты пектинового полисахарида из пижмы обыкновенной на калиевые каналы изолированных нейронов моллюска Пунегова Людмила Николаевна, Т.С.Шитова, И.И.Курбанова, Ф.С. Хасянзянова, В.Н. Набиуллин, И.М.Магдеев Пропиленгликолевые экстракты растительного и пищевого сырья Румянцева Наталья Ивановна, А.Н.Акулов, В.В.Лебедева Секретируемые арабиногалактановые белки участвуют в воспроизведении проэмбриональных клеточных комплексов морфогенного каллуса Fagopyrum tataricum (L.) gaertn.

Тимофеев Николай Петрович Защищают ли фитоэкдизоны популяции Rhaponticum и Serratula от поражения насекомыми вредителями Толстихина Валентина Васильевна, А.А. Семенов, Т.Н. Поветьева, В.Г. Пашинский Новые возможности торможения метастазирования опухолей Зеленков Валерий Николаевич, В.В.Потапов Химическая характеристика воды участка «Медвежий» дачных источников мутновского вулкана и первичная оценка биофильности химических элементов по их степени концентрирования цианобактериями в экстремальной среде обитания СЕКЦИЯ «СТРУКТУРА, ФУНКЦИИ И БИОЛОГИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ СОЕДИНЕНИЙ РАСТИТЕЛЬНОГО ПРОИСХОЖДЕНИЯ»

Пленарные доклады Булгаков Виктор Павлович, С.А. Федореев, Ю.Н. Журавлев Биотехнология вторичных метаболитов растений Дальнего Востока: от культуры клеток к промышленному производству Журавлев Юрий Николаевич Современные проблемы биотехнологии растений Миронов Владимир Федорович, А.И. Коновалов, С.Т Минзанова, А.Н Карасева, А.Б Выштакалюк, А.З. Миндубаев Научные основы комплексной переработки фитомассы амаранта Устные доклады А.А. Лапин, П.А.Гуревич, Герасимов Михаил Кузьмич, Б.А.Ефремов, В.Ф. Шарафутдинов, О.Н. Рябый Проблемы использования инновационных технологий при получении растительных экстрактов Исмагилов Рафаэл Мансурович, А.Б. Радбиль, Б.А. Радбиль Новые продукты на основе таллового пека Коровкина Наталья Владимировна Влияние солености морской воды на содержание йода в водорослях Коростелёва Юлия Александровна, Е.Н. Офицеров Особенности схем комплексного использования надземных частей амаранта и козлятника восточного Облучинская Екатерина Дмитриевна Оптимизация технологии получения экстракта из фукусовых водорослей III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г Пунегов Василий Витальевич, В.Г. Зайнуллин, В.П.Мишуров, Р.Л. Сычёв Фитопрепараты, содержащие экдистероиды Serratula coronata L. Новые перспективы и ограничения применения в сельскохозяйственном животноводстве и птицеводстве Фоменко Владислав Викторович, Н.И. Комарова, А.В. Токтарев, Г.В, Ечевский, Н.Ф. Салахутдинов Новые подходы к синтезу организованных алюмосиликатных сред с заданными каталитическими свойствами с применением природных соединений Туманова Евгения Алексеевна Эфирное масло Hyssopus officinalis L. Зависимость содержания и состава от способа его выделения из растительного сырья Стендовые доклады Бурмасова Марина Александровна (Климочкина), М.А. Сысоева, В.С. Гамаюрова Ферментативный гидролиз чаги Ганенко Татьяна Васильевна, С.А. Медведева, Б.Г. Сухов Экстрактивные вещества шишек сосны обыкновенной Гюнтер Елена Александровна Продуцирование полисахаридов каллусной культурой Silene vulgaris в зависимости от минерального состава среды Елькина Елена Андрияновна, А.А. Шубаков Селекция высокопродуктивного по полигалактуроназной активности штамма Penicillium dierckxii Кондратенко Римма Миннибаевна, Л.Р. Михайлова, О.В.Столярова, Л.А. Балтина, Г.А. Толстиков Оптимизация способов получения глицирризиновой кислоты и ее моноаммонийной соли (глицирама) из корней солодки уральской сибирских видов Миндубаев Антон Зуфарович, С.Т.Минзанова, В.Ф.Миронов, А.Н.Карасева, А.Б.Выштакалюк, В.В.Карлин, Л.Г.Миронова, В.К.Гинс, П.Ф.Кононков, М.В.Лагоденко Научные основы комплексной переработки растения Amaranthus tricolor L. сорта «Валентина»

Рязанова Татьяна Васильевна, В.А. Левданский, С.А. Кузнецова, М.Л. Щипко Изучение процесса экстракции дубильных веществ из луба березовой коры С.Е. Строгов, Г.В. Зайцева, И.М. Белоусова, Л.В. Козловцева, Е.М. Фетисова, Туркин Владимир Васильевич, А.Д. Украинцев Биореакторная система культивирования клеток растений - продуцентов шиконина Селянина Лира Ильинична Экстракция бетулина из отходов переработки березы органическими растворителями Тимофеев Николай Петрович Продуктивность, структура и элементы растительного сырья Rhaponticum carthamoides и Serratula coronata – промышленных источников химии и технологии экдистероидов Туманова Евгения Алексеевна, В.В. Пунегов Твердофазная экстракция как технологичный способ получения моно- и сесквитерпеноидов эфирного масла Origanum vulgare L.

Хамидуллина Елена Альбертовна, С.А. Медведева Экстрактивные вещества околоплодной пленки семян сосны сибирской (Pinus sibirica Du Tour) Шкрыль Юрий Николаевич, Г.К. Чернодед В.П. Булгаков, Ю.Н. Журавлев Продукция антрохинонов трансгенными культурами Rubia cordifolia Валерий Степанович Тырнов, А.Н. Завалишина, Ю.В. Смолькина, Л.В. Сериков Создание форм кукурузы – источника пищевых красителей СЕКЦИЯ «ПЕРЕРАБОТКА ДРЕВЕСИНЫ И ЛИГНОУГЛЕВОДНЫЕ МАТЕРИАЛЫ»

Пленарные доклады Бабкин Василий Анатольевич, Л.А.Остроухова, Ю.А.Малков, С.З.Иванова, Н.В.Иванова, Т.Е.Фёдорова, Н.А.Онучина Химический состав биомассы лиственницы и технология её комплексной переработки Кузнецов Борис Николаевич Новые методы получения химических продуктов из биомассы сибирских пород деревьев III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г Нифантьев Эдуард Евгеньевич, М.П. Коротеев, Т.С. Кухарева, Г.З. Казиев Проблемы комплексной переработки древесины лиственницы Устные доклады Богданович Николай Иванович, Л.Н. Кузнецова, Н.В. Орлова Каталитический пиролиз технических лигносульфонатов на Na-основании с температурной предобработкой Боголицын Константин Григорьевич Физико-химия нативного лигнина Ефанов Максим Викторович, Д.В. Дудкин.

Синтез азотсодержащих производных лигноуглеводных материалов механохимическим способом К.Г. Боголицын, Авакова Ольга Гариевна Характеристика лигнинных веществ бурых водорослей Laminaria digitata Кузнецова Светлана Алексеевна, В.Г. Данилов, О.В. Яценкова Получение микрокристаллической целлюлозы из древесных опилок Лагуткина Екатерина Васильевна, Е.С. Скрипченко, А.К. Быстрова, К.Е. Житков Фосфорилирование древесины фосфористой кислотой и ее производными Радбиль Аркадий Беньюминович, Б.А. Радбиль Глубокая переработка скипидара - эффективный путь получения продуктов растительного происхождения Самылова Ольга Александровна, А.М. Айзенштадт, К.Г. Боголицын, М.В. Богданов Оценка редокс-свойств лигнина и лигнинных компонентов сточных вод в водно-щелочной среде Скребец Татьяна Эдуардовна, К.Г. Боголицын, А.Ю. Кожевников, Н.Р.Попова Кинетика делигнификации древесины в щелочной водно-этанольной среде Хуршкайнен Татьяна Владимировна, Н.Н.Скрипова, А.В.Кучин Эффективная технология получения продуктов переработки древесной зелени хвойных Тарабанько Валерий Евгеньевич., Кузнецова С.А., Коропачинская Н.В., Черняк М.Ю., Кузнецов Б.Н.* Комплексная переработка древесины березы методами каталитического окисления и кислотного катализа Стендовые доклады Аутлов Станислав Артурович, Н.А. Мамлеева, А.Н. Пряхин, В.В. Лунин, Н.Г. Базарнова Окисление нативного лигнина озоном Богданович Николай Иванович Н.В. Орлова, О.А. Калиничева, В.Г. Степанов Термохимическая активация растительных материалов гидроксидом натрия В.А. Левданский, С.А. Кузнецова, Н.И. Полежаева, Н.М. Иванченко, Получение кверцетина из древесины лиственницы методом «взрывного» автогидролиза в присутствии бисульфита магния и сернистокислого натрия В.И. Шарыпов, Н.Г. Береговцова, С.В. Барышников, Н.Ю. Васильева, Кузнецов Борис Николаевич Синтез термообратимых гелей метилированием активированной древесины березы хлористым метилом Галашкина Наталья Геннадьевна, Д.Н. Ведерников, В.И. Рощин Динамика накопления и расходования флавонолов березы повислой в зависимости от времени сбора Ефанов Максим Викторович Ксантогенирование древесины сосны в условиях механохимической обработки Ефанов Максим Викторович, П.Р. Шотт Применение ксантогенатов лигноуглеводных материалов в качестве средства для повышения эффективности использования азотных удобрений Карманов Анатолий Петрович, Л.С.Кочева, Д.В.Матвеев Фрактальные свойства лигнинов Карманов Анатолий Петрович, Кочева Л.С., О.В. Броварова, В.Ю.Беляев Модификация лигноуглеводных материалов с целью получения сорбентов III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г Катраков Игорь Борисович, В.И. Маркин, Н.Г. Базарнова Переработка отходов растительного сырья с использованием метода кавитационной предобработки Катраков Игорь Борисович, Е.В. Карпова, В.И. Маркин, Н.Г. Базарнова, Т.В. Фролова Исследование продуктов кавитационной обработки древесины сосны методом ик спектроскопии Кутакова Наталья Алексеевна Изменение выхода БАВ при различных способах экстракции древесной зелени Локтионова Ирина Валентиновна, А.Б. Радбиль, Б.А. Радбиль, Е.П. Кулагин Получение пара-цимола из скипидара Н.Г. Базарнова, М.Ю. Чепрасова, А.Т. Янчук, Маркин Вадим Иванович Кинетика карбоксиметилирования древесины в суспензионной среде Парфенова Лариса Николаевна, Н.И.Афанасьев, Д.Г. Чухчин, И.Ю.Заручевных Термохимия реакций модификации лигносульфонатов азотсодержащими соединениями Печерский Андрей Геннадьевич, Н.В. Иванова, Ю.А. Малков, В.А. Бабкин Влияние технологических факторов на процесс экстрагирования коры лиственницы этилацетатом Селиванова Наталия Владимировна, М.В.Труфанова, С.Б. Селянина, Н.И.Афанасьев, Н.А.Макаревич, С.Е. Тельтевская Влияние активирующих добавок на процесс выделения таллового масла Трофимов Анатолий Никифорович Общие задачи науки в переработке древесного сырья Трофимова Наталья Николаевна, И.З. Курец, О.Б. Бичевина, В.А. Бабкин Гидролитическая трансформация лигноуглеводного сырья в кристаллическую глюкозу с использованием модели кислотного гидролиза целлюлозы У Юй, В.И. Рощин Фенольные соединения древесной зелени сосны обыкновенной Хабаров Юрий Германович, О.С. Бровко, Л.А. Песьякова Фотометрическое определение сульфатного лигнина с помощью азотной кислоты Тарабанько Валерий Евгеньевич, Шарыпов В.И., Черняк М.Ю., Береговцова Н.Г., Милошенко Т.П.,Кузнецов Б.Н.

Получение ценных продуктов из озерного сапропеля методами окисления и терморастворения АВТОРСКИЙ УКАЗАТЕЛЬ III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г СЕКЦИЯ «ХИМИЯ И ТЕХНОЛОГИЯ РАСТИТЕЛЬНЫХ БИОПОЛИМЕРОВ»

III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г ПЕКТИНОВЫЕ ВЕЩЕСТВА РЯДА РАСТЕНИЙ ЕВРОПЕЙСКОГО СЕВЕРА РОССИИ, ИХ СТРОЕНИЕ И СВОЙСТВА *Ю.С. Оводов, Р.Г. Оводова, С.В. Попов, О.А. Бушнева, В.В. Головченко, Е.А. Гюнтер, Е.А. Елькина, А.Я. Полле, О.В. Попейко, Г.Ю. Попова, А.А. Шубаков Институт физиологии Коми НЦ УрО РАН, г. Сыктывкар Проведен скрининг большого числа растений северного ареала России на содержание в них пектиновых веществ. Ряд растений выбран в качестве сырьевых источников для получения и дальнейшего изучения пектиновых полисахаридов.

Проведено структурное исследование пектинов ряски, смолевки и пижмы, которые были названы соответственно лемнаном, силенаном и танацетаном. Показано, что лемнан, подобно ранее изученному зостерану из морских трав, относится к редкой группе апиогалактуронановых пектинов, в то время как силенан и танацетан принадлежит к большому семейству пектинов, основу которых составляет рамногалактуронан I (RG-I).

Выяснены элементы тонкой структуры всех вышеперечисленных пектинов.

Найдено, что каллусные культуры смолевки и ряски продуцируют, наряду с пектином, кислый арабиногалактан. Изучено строение последнего. Получены клеточные линии, высокопродуктивные по биомассе каллуса растений и по синтезируемым полисахаридам, что открывает перспективу замены интактного растения на клеточные культуры в биотехнологическом производстве пектинов.

Из сабельника болотного и бадана толстолистного выделены пектины комаруман и бергенан с содержанием 57% и 85% остатков галактуроновой кислоты соответственно.

Своеобразием комарумана является повышенное (около 10%) содержание остатков рамнозы по сравнению с остальными изученными пектинами.

Определение характеристической вязкости пектинов показало, что наиболее вязкие растворы образуют бергенан и комаруман.

Установлено, что ряд пектинов повышают всхожесть, скорость прорастания семян, скорость роста побегов и корневой системы, а также урожайность огурцов и томатов.

Методами мутации и селекции получен высокопродуктивный штамм Penicillium dierckxii, продуцент высокоактивной полигалактуроназы.

Найдено, что лемнан усиливает системный иммунный ответ на введенный перорально овальбумин, в то же время комаруман способен подавлять иммунный ответ к белковым антигенам: он вдвое снижает реакцию гиперчувствительности у мышей, сенсибилизированных пероральным введением овальбумина и бычьего сывороточного альбумина. Таким образом, системный иммунный ответ может регулироваться при совместном с пектинами введением белковых пищевых антигенов.

Данная работа поддержана грантами: РФФИ № 00-04-48063;

02-04-06936;

03-04-48136а;

грантом Минпромнауки РФ № 02-4208;

грантом НШ-1260-2003.4 поддержки ведущих научных школ, координационным грантом УрО РАН и СО РАН (2003г.), грантом УрО РАН «Фундаментальные науки медицины» (2003г.).

III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г ПОДХОДЫ К СТРУКТУРНОМУ АНАЛИЗУ НЕРЕГУЛЯРНЫХ И ЧАСТИЧНО РЕГУЛЯРНЫХ ПОЛИСАХАРИДОВ (НА ПРИМЕРЕ ПОЛИСАХАРИДОВ ВОДОРОСЛЕЙ) А.И.Усов Институт органической химии им. Н.Д.Зелинского РАН, Москва, usov@ioc.ac.ru Молекулы многих природных полисахаридов построены из повторяющихся олигосахаридных звеньев. Хорошо известными примерами служат О-цепи липополисахаридов грам-отрицательных бактерий, галактаны красных водорослей и гликозаминогликаны соединительной ткани животных. В бактериальных полисахаридах эти олигосахаридные звенья часто полностью идентичны, и соответствующие биополимеры строго регулярны. В этом случае регулярность полисахарида и строение его повторяющегося звена могут быть выведены из данных спектров ЯМР, без применения химических методов структурного анализа. Однако в общем случае такие полисахариды обладают так называемой «замаскированной регулярной структурой». Это означает, что повторяющиеся звенья одной и той же полимерной молекулы могут различаться за счет частичного замещения неуглеводными группировками или остатками моносахаридов, а также за счет структурной модификации отдельных моносахаридных компонентов. Такие модификации вводятся в процессе биосинтеза (в большинстве случаев, но вероятно не всегда) на последних стадиях формирования молекулы, обычно после образования полимерной главной цепи. Очевидно, что образующиеся полимеры должны содержать набор неидентичных молекул, различающихся как степенью модификации, так и распределением модифицированных звеньев вдоль главной цепи. Биологический смысл таких структур может заключаться в адаптации свойств данного биополимера к меняющимся условиям среды путем изменения степени модификации. Другое важное следствие замаскированной регулярности – это возможность создания специфических биологически активных сайтов внутри полимерной молекулы. Наиболее известным примером последней ситуации служит молекула гепарина, построенная из дисахаридных повторяющихся звеньев, в которой путем соответствующей биосинтетической модификации образуется уникальное пентасахаридное звено, специфически связывающееся с антитромбином и обусловливающее антикоагулянтные свойства полисахарида. Структурный анализ полисахаридов, обладающих замаскированной регулярностью, предполагает идентификацию всех повторяющихся звеньев, имеющихся в молекулах, и выяснение их взаимного расположения, и является поэтому существенно более сложной задачей по сравнению с установлением строения регулярных полисахаридов.

Ярким примером полисахаридов с замаскированной регулярностью является большая группа уникальных галактанов, присутствующих в морских красных водорослях. Их молекулы имеют линейную главную цепь из строго чередующихся остатков 3-связанной -галактозы и 4-связанной -галактозы. 3-Связанная галактоза всегда принадлежит к D-ряду, тогда как 4-связанная галактоза может иметь L конфигурацию (в полисахаридах группы агара) или D-конфигурацию (в полисахаридах группы каррагинана). Кроме того, 4-связанные остатки могут быть полностью или частично представлены 3,6-ангидрогалактозой. Таким образом, существуют четыре базовых дисахаридных повторяющихся звена, два из которых характерны для агаров, а два других – для каррагинанов. Структурное разнообразие в каждой группе полисахаридов обеспечивается различной комбинацией базовых звеньев и замещением гидроксильных групп различными неуглеводными заместителями (метильными и сульфатными группами, остатками пировиноградной кислоты в виде циклических ацеталей) и моносахаридными остатками (обычно остатками D-ксилозы, 4-О-метил-L-галактозы или D-глюкуроновой кислоты).

Строго регулярные галактаны, такие как агароза, 13 встречаются в природе сравнительно редко. Агароза имеет идеальный спектр С-ЯМР, состоящий из хорошо разрешенных сигналов по числу углеродных атомов в повторяющемся дисахаридном звене. Введение заместителей в молекулу агарозы приводит к изменениям в спектре, по которым можно определить природу и расположение этих III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г заместителей в повторяющемся звене. Для анализа распределения замещенных звеньев можно воспользоваться избирательным расщеплением производных агарозы под действием сравнительно доступного бактериального фермента агаразы. Однако для высокозамещенных агаров, например, для сульфатированных ксилогалактанов кораллиновых водорослей, спектры ЯМР нативных полисахаридов интерпретировать не удается. В этом случае необходимы последовательные химические модификации (избирательное удаление остатков ксилозы с помощью расщепления по Смиту, десульфатирование) и анализ спектров ЯМР модифицированных полисахаридов, что позволяет в конечном итоге установить агаровую природу главной цепи и расположение заместителей. Аналогичная ситуация наблюдается в каррагинанах, отдельные представители которых различаются главным образом числом и расположением сульфатных групп и содержанием 3,6-ангидрогалактозы. Спектральные характеристики большинства наиболее часто встречающихся каррагинановых дисахаридных звеньев хорошо известны, что позволяет идентифицировать их в составе сложных представителей этой группы полисахаридов. Оценка распределения этих звеньев вдоль цепи полимера затруднена вследствие меньшей доступности ферментов, специфически расщепляющих те или иные участки каррагинановых молекул. Но наибольшую сложность для структурного анализа представляют гибриды агаров и каррагинанов, представители которых все чаще обнаруживаются в последние годы в красных водорослях.

Кроме красных водорослей, сульфатированные полисахариды присутствуют и в других морских макрофитах – зеленых и бурых водорослях, однако по строению углеводной части полимеры красных, зеленых и бурых водорослей не имеют между собой ничего общего. Полисахариды зеленых водорослей исследованы сравнительно мало. В недавнем цикле работ, посвященных структурному анализу ульвана, установлено, что в этом полисахариде повторяющиеся звенья не идентичны и могут различаться числом и природой моносахаридных остатков, включенных в главную цепь. Для установления строения ульвана потребовалась специальная работа по обнаружению и выделению бактериального фермента, способного расщеплять полисахарид на олигосахаридные блоки, а также использование новейших методик спектроскопии ЯМР. В то же время другие виды зеленых водорослей могут содержать более простые по структуре сульфатированные полисахариды, сильно отличающиеся от ульвана.

Сульфатированные полисахариды бурых водорослей построены преимущественно из остатков -L-фукозы и называются фукоиданами. Эти биополимеры представляют практический интерес благодаря проявляемой ими разнообразной биологической активности, что объясняется их способностью избирательно реагировать с некоторыми белками и специфически модифицировать клеточную поверхность, однако до сих пор не удалось связать проявление той или иной биологической активности с определенными структурными параметрами их молекул. Установление химического строения фукоиданов вызывает серьезные трудности. Это объясняется отсутствием признаков регулярности в молекулах большинства нативных фукоиданов, вследствие чего их спектры ЯМР не удается интерпретировать, а высокая степень сульфатирования и дополнительное наличие ацетильных групп и разветвлений в углеводных цепях затрудняют применение к ним чисто химических приемов структурного анализа. Тем не менее успехи, достигнутые в последние годы при исследовании нескольких представителей фукоиданов, связаны с удачным применением химических модификаций в сочетании со спектроскопией ЯМР, а также с использованием бактериальных ферментов для частичного расщепления на олигосахариды. С помощью этих подходов удалось обнаружить элементы замаскированной регулярности в фукоиданах из нескольких видов бурых водорослей и высказать обоснованные предположения о различном построении главной углеводной цепи в полисахаридах ламинариевых и фукусовых водорослей.

III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г ПЕКТИН САБЕЛЬНИКА БОЛОТНОГО COMARUM PALUSTRE L Р.Г. Оводова1, О.А. Бушнева1, А.С. Шашков2, А.О.Чижов Институт физиологии Коми НЦ УрО РАН, 167982, Сыктывкар, Первомайская Институт органической химии им. Н.Д. Зелинского РАН, 117913, Москва, Ленинский проспект Из надземной части свежесобранного Сабельника болотного Comarum palustre, широко распространенного на территории Европейского Севера России, экстракцией 0.7%-ным водным оксалатом аммония выделен и охарактеризован пектиновый полисахарид, названный комаруманом СР.

Показано, что в состав углеводной цепи комарумана входят в качестве основных составляющих остатки D-галактуроновой кислоты (57-60 %), а также остатки рамнозы, арабинозы и галактозы как главные нейтральные компоненты. Содержание остатков рамнозы в комарумане (10%) значительно выше, чем в известных пектиновых полисахаридах (1-4%). Выделенный пектин характеризуется высоким содержанием метоксильных групп (7%) и способностью давать очень вязкие водные растворы в сравнительно небольшой концентрации.

Установлено, что макромолекула комарумана состоит из линейных и разветвленных областей. Линейная область представлена -1,4-D-галактуронаном, который одновременно является главной углеводной цепью разветвленной области комарумана.

Результаты частичного и ферментативного гидролиза в сочетании с данными ЯМР спектрокопии и метода метилирования указывают на наличие связи между главной углеводной цепью рамногалактуронана и боковыми углеводными цепями, которые построены из остатков арабинофуранозы и галактопиранозы.

Точками разветвления боковых цепей являются остатки 2,4-ди-О-замещеной рамнозы и 4,6-ди-О-замещенной галактопиранозы.

Установлено, что комаруман обладает выраженным противоваспалительным действием.

III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г ВЛИЯНИЕ ПЕКТИНОВ, ПОЛУЧЕННЫХ ИЗ КЛЕТОК РАУВОЛЬФИИ ЗМЕЕВИДНОЙ, НА СИНТЕЗ АЛКАЛОИДОВ Винтер В.Г., 2Оводова Р.Г*., 1Козлова Р.Ю., 1Якушев Д.И., 1Поддубный В.А.

Казанский государственный университет, Казань, Институт физиологии Коми НЦ УрО РАН, Сыктывкар, victor.vinter@ksu.ru Ранее нами было показано, что полисахариды высших растений принимают участие в регуляции вторичного метаболизма клеток каллусных культур раувольфии змеевидной, способствуя накоплению алкалоидов – аймалина, резерпина, иохимбина и др.[1,2]. В настоящем сообщении приведены результаты исследования биологической активности отдельных фракций пектинов из клеток раувольфии змеевидной 60 дневной каллусной культуры этих клеток. Полисахариды выделяли из высушенной биомассы по методу, описанному ранее [1]. Было получено 4 фракции пектинов - RS1, RS2, RS3 и RS4.

Культуру ткани раувольфии змеевидной выращивали на агаризованной питательной среде с добавлением полисахаридных фракций RS1, RS2, RS3 и RS4 в концентрации 0,01;

и 50 мкг/мл среды. Стерилизацию вносимых фракций полисахаридов проводили методом фильтрации. Изменения во вторичном метаболизме культуры определяли по накоплению суммы алкалоидов, а также индолинового алкалоида аймалина, являющегося эффективным антиаритмическим препаратом.

В результате проведенной работы было показано, что при добавлении полисахаридов RS3 в концентрации 50 мкг/мл и RS4 в концентрации 1 мкг/мл накопление суммы алкалоидов на 30 сутки роста культуры составило соответственно 117 и 136% относительно контроля.

На 50-е сутки роста наблюдается резкое увеличение синтеза алкалоидов. Накопление аймалина значительно выше контрольного при добавлении в среду полисахаридных фракций RS1 в концентрации 50 мкг/мл, RS3 в концентрации 1 и 50 мкг/мл и RS4 в концентрации 0, и 50 мкг/мл. При этом количество аймалина составило, при добавлениии RS1 - 208%, RS 50 мкг/мл - 156% относительно контроля. Максимальное стимулирующее действие на синтез алкалоидов наблюдается при добавлении в среду фракции RS4 во всех концентрациях. Так, для концентрации 0,01 мкг/мл среды прирост суммы алкалоидов составил 279%, для концентрации 1 мкг/мл – 210%, а для концентрации 50 мкг/мл – 235% относительно контроля.

Методами ГЖХ и ЯМР были изучены содержание моносахаров и структура полученных фракций пектинов.

В докладе обсуждается зависимость биологической активности от структурных особенностей каждой фракции.

Работа проведена при поддержке Министерства промышленности, науки и технологии РФ (грант №02-4208 и №02-4211), РФФИ (грант №03-04-48136а) и грант Президента РФ №НШ-1260.2003.4.

Список литературы.

1.Винтер В.Г., Оводова Р.Г., Гюнтер Е.А., Козлова Р.Ю., Оводов Ю.С. Полисахариды высших растений как факторы регуляции вторичного метаболизма// Доклады Академии Наук, 2002. т.387.№1.с.1-2.

2.Козлова Р.Ю., Хабибуллин Д.И., Винтер В.Г., Минзанова С.Т., Соснина Н.А.

Регуляторная роль растительных пектинов// Труды объединенной международной конференции “Новая геометрия природы”, Казань, 2003. Т.2. Биология и медицина. с.170 174.

III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г СРАВНЕНИЕ ФАРМАКОЛОГИЧЕСКОГО ДЕЙСТВИЯ ПОЛИМЕТАЛЛИЧЕСКИХ КОМПЛЕКСОВ ПЕКТИНОВЫХ ПОЛИСАХАРИДОВ С ПРОТИВОАНЕМИЧЕСКИМИ ПРЕПАРАТАМИ А.Б.Выштакалюк, А.Н.Карасева, В.Ф.Миронов, В.В.Карлин, С.Т.Минзанова, В.В.Зобов, А.В.Ланцова, В.Р.Албутов Институт органической и физической химии им. А.Е.Арбузова КНЦ РАН, Казань, vysh@iopc.kcn.ru Анемии являются достаточно серьезной проблемой в современном мире, сопровождая некоторые заболевания. Однако в большинстве случаев они возникают в результате несбалансированного питания и дефицита микроэлементов. Как правило, для профилактики и лечения назначают препараты, содержащие витамины и неорганические соли металлов, необходимых для нормального протекания процессов кроветворения (сульфат железа, сульфат меди или цинка). Перечисленные неорганические соли металлов могут вызывать побочные реакции, раздражать слизистую желудочно-кишечного тракта, поэтому в настоящее время актуальным направлением является поиск новых эффективных соединений, содержащих катионы металлов преимущественно с анионами (лигандами) природного происхождения. В роли таковых могут выступать различные типы пектиновых веществ, способных к образованию двойных (или тройных) солей с тяжелыми, в том числе с биогенными металлами.

В настоящей работе на основе пектиновых полисахаридов были синтезированы новые водорастворимые полиметаллокомплексы (смешанные соли), содержащие Na+ и легко усвояемые двухвалентные ионы Fe2+, Co2+, Cu2+, Zn2+. Ранее было установлено, что биметаллические комплексы, содержащие натрий и один из вышеуказанных ионов, а также комплексы, содержащие натрий и все три указанных элемента, оказывают стимулирующее влияние на процессы кроветворения.

Целью данной работы было изучение особенностей фармакологического действия металлосодержащих комплексов пектиновых полисахаридов c ионами Na+, Fe2+, Co2+, Cu2+ на процессы кроветворения. Нами было также проведено сравнительное испытание полученных металлокомплексов с известными противоанемическими препаратами «Ферроплекс», «Tot`hema» и «Ferroglobin B12».

В первом эксперименте сравнивали действие двух металлокомплексов, имеющих различное соотношение металлов, с препаратом «Ферроплекс». Опыты были проведены на самцах лабораторных крыс с анемией, вызванной в результате иммунизации ДНК эритроцитов цыплят и кровопотери (1-1.5 % от массы тела животных) и на интактных самках лабораторных крыс. У самцов исследовали показатели картины крови на третий день после кровопотери, а у самок – перед началом эксперимента, затем вводили исследуемые растворы в качестве выпаиваемой жидкости, причем животные, получавшие металлокомплексы и Ферроплекс, потребляли одинаковое количество железа.

У самцов, подвергнутых иммунизации, наблюдали резкое снижение гемоглобина и числа эритроцитов по сравнению с нормативными показателями. После кровопотери гемоглобин и число эритроцитов оставались на исходном уровне. У крыс, получавших металлокомплекс, концентрация гемоглобина и число эритроцитов восстанавливались быстрее, чем в группе, получавшей препарат «Ферроплекс», и уже начиная с первой недели, достоверно превышали нормативный уровень. У интактных самок оба исследованных комплекса проявляли более выраженное стимулирующее действие на гематологические показатели, чем «Ферроплекс». При этом сохранялся пролонгированный эффект через две недели после перевода животных на контроль.

III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г Во втором эксперименте действие металлокомплексов сравнивали с препаратами Tot`hema и Ferroglobin B12. Опыт был проведен на самцах лабораторных крыс, подвергнутых кровопотере в объеме 0.5-0.6 % от массы животного.

Было показано, что препараты металлокомплексов значительно повышали концентрацию гемоглобина и число эритроцитов по сравнению с препаратом «Tot`hema» ( 0.001 и 0.05 соответственно). Препарат «Ferroglobin-B12», имеющий более сбалансированный состав по витаминам и микроэлементам, вызывал повышение концентрации гемоглобина и числа эритроцитов по сравнению с контрольной группой (на 7-8% и на 6% соответственно). Под действием металлопектиновых комплексов наблюдали эффект, превосходящий действие препарата «Ferroglobin-B12». Однако при этом достоверных различий между группами, получавшими металлопектиновые комплексы и Ferroglobin-B12, не наблюдалось.

Также были взяты для сравнения двойная соль и препарат Tot`hema, содержащие в 2 раза больше ионов Fe. Было показано, что железо-натрий пектинат значительно улучшал показатели как по количеству эритроцитов, так и концентрации гемоглобина, в то время как препарат «Tot`hema» достоверно увеличивал только концентрацию гемоглобина.

В работе также исследовали влияние металлокомплексов на число лейкоцитов – важный показатель состояния иммунной системы животных. В исходных значениях не было достоверных различий между группами. Во всех группах животных не отмечено каких-либо различий с исходными показателями и контрольными значениями.

Таким образом, можно заключить, что смешанные пектиновые соли с металлами Fe, Co, Cu и Zn значительно быстрее восстанавливают гематологические показатели и способствуют лучшему усвоению железа, чем сравниваемые импортные препараты «Ферроплекс», «Tot`hema» и «Ferroglobin B12» и не оказывают каких-либо побочных эффектов на животных. В связи с этим, они могут быть рекомендованы как высокоэффективные противоанемические средства для фармакологии и ветеринарии.

Работа выполнена при финансовой поддержке совместного гранта РФФИ – Академия наук Татарстана (№ 03-03-96244).

III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г СОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ ТЕХНОЛОГИИ ПОЛУЧЕНИЯ АРАБИНОГАЛАКТАНА Е.Н. Медведева*, Л.Г. Колзунова**, В.А. Бабкин, Ю.А. Малков, Л.А. Остроухова, Н.А. Онучина, Л.А. Еськова Иркутский институт химии СО РАН, г. Иркутск, woodemed@irioch.irk.ru **Институт химии ДВО РАН, г. Владивосток, kolzunova@ich.dvo.ru Среди полисахаридов растительного происхождения особое место занимает арабиногалактан (АГ) лиственницы. Это обусловлено комплексом уникальных свойств этого полисахарида и его высоким содержанием в древесине (до 15-20 %).

В последние годы резко активизировались исследования биологической активности АГ. Этому способствуют такие его свойства как высокая растворимость в воде, уникально низкая вязкость растворов, узкое молекулярно-массовое распределение, а также биоразлагаемость и низкая токсичность. АГ проявляет иммуномодулирующие, митогенные, антимутагенные, гастропротекторные и антимикробные, а также пребиотические свойства.

Присущие ему виды биологической активности в сочетании с высокой мембранотропностью и диспергирующей способностью открывают широкие перспективы использования АГ в медицине, ветеринарии, пищевой и косметической промышленности. Хорошая клеящая способность и диспергирующие свойства позволяют применять его в целлюлозно-бумажной промышленности и полиграфии. Являясь полифункциональным соединением, содержащим реакционноспособные гидроксильные, альдегидные и карбоксильные группы, арабиногалактан может быть перспективным синтоном для получения новых биологически активных веществ.

В лаборатории химии древесины ИрИХ СО РАН создана технология получения АГ из древесины лиственницы, отличающаяся высокими технологическими и экономическими показателями. Разработанная технология позволяет получать водный экстракт полисахарида с концентрацией сухих веществ до 15-16 % и содержанием в них арабиногалактана до 95 %.

Для успешного применения АГ в пищевой, фармацевтической, косметической промышленности и медицине требуется продукт высокой степени чистоты.

Предварительные эксперименты и экономические расчеты показали, что наиболее перспективным способом получения сухого АГ высокой степени чистоты является сочетание концентрирования и очистки его методом ультрафильтрации с последующей распылительной сушкой. Ультрафильтрационный метод обладает рядом преимуществ. Он позволяет объединить несколько технологических стадий в одном процессе, проводить селективное разделение компонентов раствора без использования дополнительных реагентов, технологически прост, экономичен, обладает малой энергоемкостью и возможностью проведения процессов при температуре окружающей среды, что особенно важно при переработке растворов природных органических веществ, содержащих термически неустойчивые биологически ценные компоненты [1].


Проведенные исследования показали, что исходные экстракты содержат коллоидные примеси, которые не удаляются обычным фильтрованием. Ультрафильтрационные мембраны быстро блокируются такими примесями, вследствие чего производительность баромембранного процесса резко снижается, а сами мембраны требуют частой регенерации.

Для удаления коллоидных примесей нами разработан простой и эффективный способ осветления водных экстрактов АГ методом флокуляции с применением промышленных синтетических флокулянтов катионного типа. Исследовано влияние различных факторов на эффективность осветления (природа и способ внесения флокулянта, концентрация его рабочего раствора, концентрация и температура осветляемого экстракта, содержание в нем фенольных примесей). Найдены условия, позволяющие осуществлять флокуляцию без III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г использования неорганических коагулянтов. Установлено, что повышение температуры и снижение концентрации осветляемого экстракта позволяют сократить расход флокулянта.

Получаемый по разработанной нами технологии экстракт имеет температуру 40-70 оС, поэтому процесс осветления целесообразно вести без охлаждения. Обнаружено, что в результате флокуляции фенольные примеси из продукта не удаляются. Содержание сухих веществ в экстракте после флокуляции снижается не более, чем на 2-3 %.

Осветленные экстракты пригодны для дальнейшей очистки и концентрирования методом ультрафильтрации. Ультрафильтрацию осуществляли с использованием мембран различной природы и пористости. Исследования показали, что производительность баромембранной фильтрации снижается с повышением исходной концентрации растворов АГ и увеличивается с ростом перепада давления и размера пор мембран. Скорость фильтрации падает во времени по мере концентрирования раствора. Показано, что степень концентрирования и производительность процесса фильтрации можно регулировать и задавать эффективные для используемой технологии рабочие параметры баромембранной фильтрации, которые позволяют получать продукты с заданными характеристиками.

Установлены оптимальные параметры, соответствующие достаточно высокой степени концентрирования растворов и экономически выгодной скорости фильтрации.

Анализ полученных концентратов и фильтратов свидетельствует о том, что в результате ультрафильтрации осветленных экстрактов АГ одновременно происходит концентрирование их до заданного уровня (в 10-15 раз) и очистка от фенольных примесей, снижение содержания которых в концентрате уменьшается на 1-2 порядка по сравнению с исходным раствором. Степень очистки зависит от содержания АГ в исходном растворе и его загрязнения примесями, от характеристик используемых мембран и условий фильтрации, а также от степени концентрирования растворов. Исследования показали, что фенольные примеси переходят в пермеат на начальных стадиях фильтрации, и их содержание в первых фракциях фильтрата максимально.

Установлено, что, наряду с фенольными веществами, в фильтрат переходят низкомолекулярные фракции АГ;

общее содержание сухих веществ в фильтратах составляет 1-2.5 %. Продукты, полученные высушиванием концентратов, достаточно однородны по молекулярной массе. По данным гель-хроматографииё, она составляет ~20 kDa.

Продолжая работу по совершенствованию технологии получения высокочистого АГ, мы исследовали кинетику экстракции АГ. Показано, что процесс экстракции включает в себя две стадии – быструю и медленную. Выявлена линейная зависимость между удельной поверхностью частиц и количеством АГ, перешедшим в раствор на быстрой стадии экстракции (доверительный интервал R2 = 0,96). На качественные характеристики АГ степень измельчения древесины влияния не оказывает.

Произведен расчет коэффициентов диффузии и массопередачи, а также диффузионного критерия Био (Вi), характеризующего влияние гидродинамических условий на скорость извлечения. Для частиц с размером более 2 мм значение критерия Вi в несколько раз больше 1, что указывает на незначительное влияние скорости омывания частиц на извлечение АГ, а скорость процесса в основном определяется внутренней диффузией. Для частиц 0,5-1 мм скорость извлечения АГ определяется как гидродинамическими условиями, так и внутренней диффузией. Полученные данные по параметрам массопередачи можно использовать для расчета процессов экстракции АГ из измельченной древесины лиственницы, проводимых в аналогичной гидродинамической обстановке.

* Автор для переписки Список литературы 1. Л.Г. Колзунова, Л.А. Земнухова, Г.А. Федорищева и др. // Журн. прикл. химии. 2000. Т.

73. № 10. С. 1644.

III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г ПРИРОДНЫЕ СИНТОНЫ ДЛЯ СОЗДАНИЯ НОВЫХ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ СОЕДИНЕНИЙ С.А. Медведева, Г.П. Александрова, Л.А. Грищенко, И.А. Антипова, С.А. Муха, Б.Г. Сухов, Б.А. Трофимов Иркутский институт химии СО РАН, msa@irioch.irk.ru Интеграция научных знаний и методов исследования в истории науки уже неоднократно приводила к новым открытиям и новым теориям. Современная тенденция интегрирования химии природных соединений и синтетической химии, основанная на использовании природных соединений в качестве синтонов для получения новых биологически активных веществ, открывает пути не только к синтезу бесконечного ряда новых соединений, но и соединений с программируемыми и управляемыми свойствами. Эти новые материалы могут найти широкое применение в различных областях техники, нелинейной оптики, химии, медицины и биологии.

Из природных соединений мы выбрали полисахарид – арабиногалактан, выделенный из древесины лиственницы сибирской Larix sibirica и -пирон –мальтол, выделенный из хвои пихты сибирской Abies sibirica L.

Разработанный нами новый общий подход к синтезу металлопроизводных арабиногалактана позволил получить широкую серию соединений, в частности, содержащих оксиды железа (в том числе модифицированные кобальтом, медью, никелем) и нульвалентные металлы (серебро, палладий, платина) [1, 2]. Содержание металла в соединениях в зависимости от условий синтеза может изменяться: для оксидов железа в пределах 0,4 - 3,5 %, для благородных металлов от 3,3 % до 22,0 %, содержание других металлов в феррикомпозитах укладывается в интервал 0,5 - 2,0%.

Особенностью синтеза является формирование металлосодержащей фазы в виде наноразмерных частиц, у которых ядро микросфероида оксида железа имеет диаметр 16- нм, а нульвалентных серебра, палладия, платины - 7-13 нм. Во всех случаях формирование композитов, очевидно, имеет сходную природу и представляет собой самоорганизацию неоргано-органических полимерных структур, включающую регуляцию размеров металлосодержащих фрагментов на наноразмерном уровне за счет специфической адсорбции полисахарида на поверхности растущих неорганических наночастиц. При этом образующаяся на этих частицах объемная (по сравнению с ядром) полисахаридная оболочка препятствует дальнейшему агрегированию наночастиц, одновременно придавая им также специфические свойства (водорастворимость, способность вращать плоскость поляризованного света). В случае гибридных наночастиц оксида железа(II, III) и другого металла металлооксидное ядро, вероятно, формируется по принципу замещения части атомов железа(II) атомами соответствующего металла(II), а при образовании нанокомпозитов нульвалентных металлов (серебра, палладия, платины) имеет место редокс-реакция полисахаридной матрицы с солями этих металлов.

Синтезированные наноразмерные композиты проявляют специфические, порой уникальные физические свойства. Так, нанокомпозиты оксида железа обладают остаточной намагниченностью ( 7·10-4 Тл) и коэрцитивной силой ( 500 А/м), отличающейся от таковых для магнетита, и иной зависимостью магнитной проницаемости от напряженности магнитного поля. Нанокомпозиты, содержащие нульвалентные металлы, имеют ряд уникальных оптических и каталитических свойств: серебросодержащие нанокомпозиты проявляют характерный для металлических наночастиц плазмонный резонанс, а палладийсодержащие - обнаруживают высокую активность и селективность в катализе реакций кросс-сочетания терминальных ацетиленов и арилгалогенидов [2].

III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г Кроме того, синтез на основе биологически активной матрицы арабиногалактана, обладающей мембранотропными и иммуномодулирующими свойствами [3], позволил получить широкую серию фармакологически значимых соединений, которые обладают синергетическими свойствами, присущими как арабиногалактану, так и введенному металлу.

Так ферроарабиногалактан проявляет антианемический эффект. Он улучшает гематологические, биохимические, морфологические показатели при экспериментальной железодефицитной анемии, в значительной степени за счет того, что комбинирование железа с арабиногалактаном, который обладает тропностью к асиалогликопротеиновым рецепторам клеток печени и селезенки, обеспечивает адресную доставку ионов железа в клетки органов депо. Ферроарабиногалактан обладает железокорригирующим эффектом, в результате чего может быть рекомендован для проведения терапии при железодефицитной анемии [4].

Аргентоарабиногалактаны обладают сильной антимикробной активностью в отношении грамотрицательных энтеробактерий, аскомицетов и грамположительных кокков [5].

Не менее интересным для синтетических работ является мальтол (3-гидрокси-2-метил 4-пирон). Тем более, что сам мальтол является малотоксичным веществом (LD50 1400 мг/кг).


Он обладает антиоксидантным свойствами [6], бактерицидной активностью, стимулирует регенерацию тканей, способен усиливать действие лекарственных препаратов. Используя орторасположение двух кислородсодержащих функциональных (-СО и -ОН групп) мальтола, обуславливающих его склонность к образованию 2-координированых соединений с ионами различных металлов в слабощелочной среде мы синтезировали широкую серию нейтральных трис(3-гидрокси-2-метил-4-пиронато)железо(III) и бис(3-гидрокси-2-метил-4-пиронато) комплексов двухвалентных меди, кобальта, никеля, цинка. Особое внимание было уделено исследованию водорастворимого мальтолата кальция, который может явиться потенциальным препаратом для лечения пародонта – одного из серьезных заболеваний века.

В опытах in vivo было доказано отсутствие токсического действия мальтолата кальция при его пероральном, внутрибрюшинном введении в организм и накожном нанесении [7]. Это открывает широкие перспективы его дальнейшего исследования.

Таким образом, совершенно очевидно, что на основе доступных природных веществ, в частности, арабиногалактана и мальтола, открываются простые пути к синтезу биологически активных веществ и материалов с необычным комплексом свойств.

Список литературы 1. Медведева С.А., Александрова Г.П., Дубровина В.И., Четверикова Т.Д., Грищенко Л.А., Коновалова Ж.А., Красникова И.М., Феоктистова Л.П., Тюкавкина Н.А., Голубинский Е.П. Химия и компьютерное моделирование. Бутлеровские сообщения. 2002. №7. С.45-50.

2. Трофимов Б.А., Сухов Б.Г., Александрова Г.П., Медведева С.А., Грищенко Л.А., А.Г. Малькина, Феоктистова Л.П., Сапожников А.Н., Дубровина В.И., Мартынович Е.Ф., Тирский В.В., Семенов А.Л. ДАН. 2003. Т.293. №5. С.634-635.

3. Дубровина В.И., Медведева С.А., Александрова Г.П., Тюкавкина Н.А., Голубинский Е.П., Иванова Т.А., Коновалова Ж.А. Фармация. 2001. № 5. С.26-28.

4..Красникова И.М. Автореф. дис. к.б.н. Иркутск. 2003. 26 с.

5. Aleksandrova G. P., Grishchenko L.A., Fadeeva T.V., Medvedeva S.A. The 2-th inter.

conf. on chemical investigation and utilization of natural resourses. Mongolia. 2003.

Р.106.

6. Бабенкова И.В., Теселкин Ю.О., Медведева С.А., Тюкавкина Н.А., Колесник Ю.А., Ребров Л.Б., Быков В.А., Муха С.А. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2001. № 4. С.22-25.

7. Молоков В.Д., Казанкова Е.М., Лапушинская Х.С., Медведева С.А., Муха С.А., Антипова И.А. Материалы межрегиональной научно-практической конференции «Актуальные проблемы и перспективы развития стоматологии». Якутск. 2003. С. – 61.

III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г ПОЛУЧЕНИЕ ВОДОРАСТВОРИМЫХ КОМПЛЕКСОВ ПЕКТИНОВЫХ БИОПОЛИМЕРОВ С ДВУХВАЛЕНТНЫМИ s-МЕТАЛЛАМИ С.Т.Минзанова, А.Н.Карасева, В.Ф.Миронов, В.В.Карлин, А.Б.Выштакалюк Институт органической и физической химии им. А.Е.Арбузова КНЦ РАН, г. Казань, minzanova@iopc.knc.ru Пектиновые биополимеры являются кислыми полисахаридами, содержащими карбоксильные группы в каждом мономерном фрагменте полимера. Согласно литературным данным пектины обладают биологической активностью многообразного спектра действия.

Одним из эффективных путей повышения биологической активности полимеров полисахаридной природы, как известно по группе полисахаридов широко изученной целлюлозы, является химическая модификация, приводящая к новым производным этих биополимеров. Наибольший интерес в последние годы вызывает химическая модификация полисахаридов методами координационной химии с получением металлокомплексов различной структуры. Наиболее важными среди них являются комплексы пектиновых биополимеров с биогенными s-металлами – Са2+ и Мg2+, изучение закономерностей комплексообразования которых является целью настоящей работы.

Во многих литературных источниках (для обзора см. [1]) описаны нерастворимые в воде комплексы пектинов с Са2+ и Мg2+, образующие гели в водных средах. Для проявления биологической активности важным фактором является растворимость веществ в водной среде, в связи с чем мы поставили задачу получения водорастворимых комплексов пектинов с Са2+ и Мg2+. Эти металлы являются биогенными макроэлементами, участвующими во многих жизненно важных процессах человека. Так, кальций участвует в процессе синтеза костной ткани, регулирует сократительные функции белков, участвует в процессе свёртывания крови. Магний участвует в ферментативных процессах, входит в состав рибосом, участвует в реакциях системы АДФ и АТФ, являющейся источником химической энергии. Все это позволяет ожидать, с учетом биологической основы лиганда – пектинового биополимера, образования новых биологически активных веществ с включением ионов Са2+ и Мg2+.

Нами получены новые водорастворимые металлокомплексы пектинов с этими ионами.

Поставленную задачу удалось решить, взяв в качестве матрицы для комплекса не сам пектин, а натриевую соль полностью деэтерифицированного пектина – пектовой кислоты со степенью солеобразования 100 % (пектат натрия). При этом комплексы Са2+ и Мg2+ получены по реакции лигандного обмена ионов Nа на соответствующий s-металл в пропорциях, определенных на основе экспериментального исследования закономерностей комплексообразования в системе пектат натрия – соль s-металла. Для рассматриваемых систем найдена область концентраций 0.019 – 0.002 г – экв/л, в которой наблюдается селективное образование только водорастворимых соединений без побочного образования нерастворимых структур. Исходя из этих данных мы разработали способ количественного получения водорастворимых комплексов пектинов с ионами Са2+ и Мg2+, пригодный для укрупненного лабораторного и технологического применения.

Получены первые данные о положительном влиянии комплексов на гематологические показатели крови в опытах на лабораторных животных. Биологических испытания проводились методом выпаивания концентрированных и разбавленных растворов комплексов. В качестве животных использовался молодняк белых лабораторных крыс и взрослые животные.

Работа выполнена при поддержке совместного гранта РФФИ – Академия наук Татарстана (№ 03-03-96244).

Список литературы [1] Ю.Е.Алексеев, А.Д.Гарновский, Ю.А.Жданов. // Успехи химии. 1998. Т. 67. С.723-744.

III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г ПРОТОЧНЫЙ ФЕРМЕНТОЛИЗ ПЕКТИНОВЫХ ПОЛИСАХАРИДОВ Н.Ю. Селиванов, О.Г. Шкодина, А.А. Галицкая, В.А. Богатырев, В.В. Игнатов Институт биохимии и физиологии растений и микроорганизмов РАН selivanov@ibppm.sgu.ru Ферментативная трансформации в природе является базовым механизмом реализации биологической активности углеводных полимеров и участия их в регуляции важнейших физиологических процессов организма. Как и у других биополимеров, у полисахаридов биологической активностью обладают отдельные фрагменты молекулы. При этом проявление специфической биологической активности полисахаридов предполагает рецепцию части молекулы - структурного домена полимера или его олигосахаридного фрагмента. В связи с этим крайне важна стерическая доступность и диффузионная подвижность рецептируемых участков.

Фрагментация полисахаридной молекулы под воздействием гликолитических ферментов является основным механизмом, обеспечивающим образование биологически активных олигосахаридов – биохимических медиаторов различных физиологических процессов, защитных реакций, неоморфогенеза и др.

В случае пектиновых полимеров, характеризующихся гетерогенным составом, наличием разветвлений и модификаций функциональных групп в их структуре, фрагментация приводит к образованию большого числа олигосахаридов различного строения, и лишь часть из них обладает специфической активностью. Основная причина гетерогенности получаемых олигосахаридных продуктов заключается в хаотичности процесса деградации углеводного полимера. В тоже время, для практического применения биологически активных олигосахаридов крайне важным является стандартизация состава и свойств получаемых продуктов.

Для решения этих задач авторами предложен метод регулируемого ферментолиза углеводных полимеров, позволяющий проводить реакцию в проточном режиме.

Метод основан на стерической иммобилизации фермента, ускоренной диффузии субстрата и продуктов реакции. Разработанный метод позволяет исследовать процесс ферментативной деградации при разных соотношениях фермент - субстрат и различных условиях протекания реакции – рН, Ме++ и др. В качестве модельного фермента была использована пектиназа из Aspergillus niger ЕС 3.2.1.15 с удельной активностью 1.52 Е/мг, субстратами служили пектиновые полисахариды, выделенные из различных источников, различающиеся моносахаридным составом и степенью этерификации.

Проведенные исследования показали воспроизводимость результатов проточного ферментолиза и аддитивность его эффекта. Так, проведение одного цикла ферментолиза приводит к разрушению 10 - 27 % исходных пектиновых полимеров. При использовании последовательного, циклического режима (проведение 3-х циклов ферментолиза) степень фрагментации достигает 85%. Компонентный состав получаемых олигосахаридных препаратов зависит от условий реакции – скорости протока, плотности посадки фермента и структуры полисахарида. Так, олигосахаридные препараты, полученные проточным ферментолизом цитрусового, яблочного и тыквенного пектинов, имеют различный компонентный состав. Показаны отличия олигосахаридов, полученных из нативных и деэтерифицированных пектиновых полимеров, что предполагает возможность использования модификации карбоксильных групп для получения олигосахаридов с требуемыми характеристиками.

Для исследования динамики ферментативного процессинга пектиновых полимеров получены препараты пектинов и пектиназ, иммобилизованных на частицах коллоидного золота 15 и 30 нм в диаметре. Разрабатывается метод оценки взаимодействия пектиназ с пектиновыми полимерами на основе данных спектрофотометрии поглощения и рассеяния света оптического диапазона и динамического светорассеяния.

III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г ХИМИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ФУКОИДАНОВ ИЗ ФУКУСОВЫХ ВОДОРОСЛЕЙ Fucus distichus L. и Fucus serratus L.

М.И.Билан*, А.А.Грачев Институт органической химии им. Н.Д.Зелинского РАН, Москва, mbilan@mail.ru Из бурой водоросли Fucus distichus, собранной в Баренцевом море, экстракцией разбавленным раствором хлорида кальция при нагревании с последующим осаждением бромидом гексадецилтриметиламмония выделен суммарный препарат фукоидана. С помощью ионообменной хроматографии на колонке с DEAE-сефацелем получены высокосульфатированная фракция F4 (с выходом 46.5% от суммарного препарата), и фракция F3, содержащая меньшее количество сульфатных групп (с выходом 14.0 %).

Количественное определение состава F4 показало, что эта фракция содержит фукозу, сульфат и ацетат в мольном соотношении 1:1.21:0.08. C помощью нескольких методик двумерной спектроскопии ЯМР (COSY, TOCSY, ROESY, HSQC, HMBC) установлено, что полисахарид построен из чередующихся остатков 3-связанной -L-фукопиранозы, сульфатированной по положениям 2 и 4, и 4-связанной -L-фукопиранозы, сульфатированной только по положению 2. Имеются лишь незначительные отклонения от этой структуры за счет ацетилирования некоторой части гидроксильных групп и неполного сульфатирования отдельных повторяющихся звеньев, что не сказывается существенным образом на качестве спектров ЯМР. Таким образом, впервые из бурых водорослей был выделен фукоидан с регулярной структурой, и его строение установлено с использованием бездеструктивных методов анализа [1].

В отличие от фракции F4, фракция F3 имеет более сложный состав и содержит фукозу, сульфат, ацетат, ксилозу и галактозу в мольном соотношении 1:0.66:0.13:0.12:0.05. Спектр С-ЯМР фукоидана F3 не поддавался полной расшифровке. Сольволизом в диметилсульфоксиде с метанолом был получен десульфатированный фукоидан, который гель-фильтрацией на колонке с TSK-HW-65(S) (Toyopearl) был разделен на три фракции.

Фракция F3.1, имеющая наибольший молекулярный вес, содержала, кроме фукозы, значительные количества ксилозы и галактозы, ее спектры ЯМР также не поддавались полной расшифровке. Фракции F3.2 и F3.3 состояли практически только из фукозы. По данным спектроскопии ЯМР, они построены из чередующихся остатков 3-связанной и 4 связанной -L-фукопиранозы, но различаются характером ацетилирования: F3.2 несет О ацетильные группы в положениях 3 и 4, а F3.3 - только в положениях 4 остатков фукозы.

Аналогично из бурой водоросли F. serratus, также собранной в Баренцевом море, был выделен суммарный препарат фукоидана и его наиболее сульфатированная фракция F4;

получен десульфатированный препарат F4. По данным спектров ЯМР, десульфатированный фукоидан имеет в своем составе 3- и 4-замещенные остатки -L-фукопиранозы.

Таким образом, выделенные полисахариды, как и несколько других описанных недавно фукоиданов из водорослей порядка фукусовых [2], имеют в основе молекулы линейную углеводную цепь, построенную из остатков -L-фукопиранозы с регулярным чередованием связей 13 и 14 между ними.

Список литературы 1. Bilan, M.I.;

Grachev, A.A.;

Ustuzhanina, N.E.;

Shashkov, A.S.;

Nifantiev, N.E.;

Usov, A.I.

Carbohydr.Res., 2004, 339, 511-517.

2. Bilan, M.I.;

Grachev, A.A.;

Ustuzhanina, N.E.;

Shashkov, A.S.;

Nifantiev, N.E.;

Usov, A.I.

Carbohydr.Res., 2002, 337, 719-730.

*Автор для переписки III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г ВЫДЕЛЕНИЕ И ХАРАКТЕРИСТИКА ПОЛИСАХАРИДОВ ИЗ КЛЕТОЧНОЙ КУЛЬТУРЫ LEMNA MINOR L.

Е.А.Гюнтер*, О.В. Попейко, Ю.С. Оводов Институт физиологии Коми НЦ УрО РАН, Сыктывкар, elena@physiol.komisc.ru Основным полисахаридом ряски малой является апиогалактуронановый пектин, названный лемнаном, основные структурные черты которого были установлены ранее [1].

Лемнан обладает иммуномодулирующей активностью, в частности, стимулирует фагоцитарную активность нейтрофилов и макрофагов [1]. Настоящая работа посвящена оптимизации условий выделения и изучению общей химической характеристики полисахаридов, продуцируемых каллусной культурой ряски малой.

Способ выделения полисахаридов включает в себя экстракцию водой, обработку биомассы 0,05%-ным водным формалином, разбавленной соляной кислотой и экстракцию водным оксалатом аммония. Обработка водным формалином с целью связывания полифенольных соединений, дезактивации ферментов и удаления низкомолекулярных соединений позволяет получить очищенный пектиновый полисахарид.

Экстракцией водой и раствором оксалата аммония из каллуса ряски выделено две фракции, представляющие собой кислый арабиногалактан и пектин соответственно. Выход полисахаридов от сухой массы составил 3%.

Остатки галактозы и арабинозы в соотношении 2,5:1 являются основными составляющими кислого арабиногалактана. Другие моносахариды, такие как ксилоза, глюкоза, рамноза, манноза содержатся в небольшом количестве. Содержание гликуроновых кислот составляет 7%, содержание белка – 42%. Суммарное содержание нейтральных моносахаридов составляет 47%.

В пектиновой фракции основными компонентами являются остатки гликуроновых кислот (54%), галактозы (7%) и арабинозы (7%). Кроме них в гидролизате полисахарида обнаружены в небольшом количестве остатки глюкозы, ксилозы, апиозы, рамнозы и маннозы. Присутствующие во фракции остатки рамнозы и апиозы являются составляющими пектинового полисахарида. Остатки глюкозы, ксилозы и маннозы, скорее всего, являются компонентами сопутствующих пектинам резервных полисахаридов и гемицеллюлоз.

Суммарное содержание нейтральных моносахаридных остатков составляет 25%, содержание белка – 8%. В образцах пектина, полученных нами из каллуса ряски, обнаружены гликуроновые кислоты в том же количестве, что и ранее в нативном растении [1]. В то же время содержание остатков галактозы и арабинозы выше в два раза в образцах из каллуса, чем из растения. Количество апиозы в лемнане из растения значительно выше, чем в пектине из каллуса. Отличия в содержании нейтральных моносахаридных остатков, вероятно, связаны с переходом клеток к дедифференцированному состоянию, а также с условиями культивирования каллусных культур и их генетическими особенностями.

Таким образом, каллусная культура ряски малой, наряду с пектином, продуцирует кислый арабиногалактан, вероятно, представляющий собой промежуточный продукт биосинтеза пектина. Используемый способ выделения, позволяет получить более очищенный пектиновый полисахарид.

1. Р.Г. Оводова, В.В. Головченко, А.С. Шашков, С.В. Попов, Ю.С. Оводов. // Биоорг.

Хим. 2000. Т. 26. С. 743-751.

Работа поддержана грантом РФФИ № 03-04-48136, грантом поддержки ведущих научных школ № НШ-1260.2003, грантом № 02-4208 Министерства промышленности, науки и технологий РФ, грантом УрО РАН.

III Всероссийская конференция “Химия и технология растительных веществ” Саратов, 7-10 сентября 2004г ВЫДЕЛЕНИЕ И ИЗУЧЕНИЕ МОНОСАХАРИДНОГО СОСТАВА ПОЛИСАХАРИДОВ ИЗ СЕМЯН ЗЕРНОВЫХ КУЛЬТУР Е.А. Елькина*, Е.А. Новикова, А.А. Шубаков Институт физиологии Коми НЦ УрО РАН, Сыктывкар e-mail: elkina@physiol.komisc.ru Полисахариды представляют собой группу углеводсодержащих биополимеров клеточных стенок растений и играют важную биологическую роль, выполняя функции структурообразования, ионного и водного обмена [1]. Полисахариды имеют широкое применение в медицине, парфюмерии, пищевой промышленности. Исследование строения полисахаридов и, в частности, пектинов представляют большие трудности вследствие того, что их макромолекулы состоят из различающихся блоков и характеризуются нерегулярностью, отсутствием повторяющихся звеньев [2,3].

Цель исследования заключалась в разработке метода выделения полисахаридов из семян зерновых культур и определении их моносахаридного состава.

Для выделения полисахаридов из семян пшеницы Triticum aestivum L. и ржи Secale cereale L. была проведена их многократная экстракция при различных условиях, в результате получено по пять фракций, в которых с помощью бумажной хроматографии определяли качественный состав нейтральных моносахаридов. Для количественного анализа моносахаридов указанные фракции гидролизовали в присутствии трифторуксусной кислоты в жестких условиях, полученные нейтральные моносахариды переводили в соответствующие ацетаты полиолов. Количественный состав моносахаридов определяли с помощью газожидкостной хроматографии.

Проведенный анализ моносахарного состава полисахаридов семян пшеницы и ржи показывает, что в трех полисахаридных фракциях пшеницы преобладает глюкоза (55,1 83,9%) и в одной - манноза (64,9%). В семенах ржи в двух полисахаридных фракциях доминирует глюкоза (85,5 и 23,7%), в двух фракциях преобладают ксилоза (32,5-42,3%) и арабиноза (26,6-35,9%), и в основном три моносахарида – ксилоза (29,6%), глюкоза (25,9%) и арабиноза (19,3%), - доминируют в одной из пяти фракций. То есть, моносахаридный состав полисахаридных фракций семян пшеницы и ржи значительно отличается между собой. Это может свидетельствовать, по-видимому, о сложном и разнообразном составе полисахаридов в семенах пшеницы и ржи.

Список литературы 1. Н.П. Кораблева, Т.А. Платонова // Прикл. биохим. микробиол. 1995. Т. 31. № 1. С.

103-114.

2. Ю.С. Оводов // Биоорган. химия. 1998. Т. 24. № 7. С. 483-501.

3. О.А. Бушнева, Р.Г. Оводова, А.С. Шашков и др. // Биохимия. 2003. Т. 68. Вып. 12.

С. 1687–1696.



Pages:   || 2 | 3 | 4 | 5 |   ...   | 8 |
 





 
© 2013 www.libed.ru - «Бесплатная библиотека научно-практических конференций»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.